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孕妇外周血检测微小RNA行产前诊断的研究进展

时间:2024-08-31

李冬焕 综述 苏放明 审校

(暨南大学第二临床医学院深圳市人民医院,广州 深圳 518020)

孕妇外周血检测微小RNA行产前诊断的研究进展

李冬焕 综述 苏放明 审校

(暨南大学第二临床医学院深圳市人民医院,广州 深圳 518020)

寻找一种准确、无创的产前诊断方法取代目前的有创性检查,提高人口出生质量,是人们的追求目标。而检测孕妇外周血中胎儿细胞游离核酸物质逐渐发展成一种无创产前诊断新途径。本文综述了孕妇外周血中检测微小RNA行产前诊断的可行性及预测妊娠相关疾病的研究进展。

游离微小RNA;孕妇外周血;无创性产前诊断;妊娠相关性疾病

长期以来,人们一直致力于寻找一种早期、安全、简便、准确的产前诊断方法,以排查胎儿染色体异常疾病,降低病残儿出生率,提高人口质量。传统的产前诊断方法包括中孕期绒毛膜取样、羊膜腔或脐血穿刺,因其为有创性操作而不被广大孕妇所接受。孕妇血液中胎儿有核红细胞因数量稀少且分选困难,经宫颈取样收集胎儿滋养层细胞因收集方法并非完全无创从而限制了它们在临床中的应用。近年来,检测孕妇外周血中胎儿细胞游离脱氧核糖核酸(DNA)或核糖核酸(RNA)物质逐渐发展成一种无创产前诊断新途径。与此同时,母血中另外一种游离核酸分子即胎儿游离微小RNA作为一个新兴的研究领域、一种非侵入性的早期检测手段,目前已显示出了良好的发展前景和巨大的应用潜力。本文就其研究进展做一综述。

1 miRNA的生物学特性

微小RNA(microRNA,miRNA,miR)于1993年由Lee等人在线虫中发现,长度为18~25个核苷酸,为非编码小分子RNA,在基因转录后水平上通过与靶m RNA互补结合,抑制m RNA的翻译或降解m RNA,发挥对约30%人类基因表达的调节作用,参与调控个体发育、细胞凋亡、细胞增殖和分化等生命活动[1]。

miRNA分子同已知的循环核酸(DNA和 RNA)一样,广泛存在于正常人和不同种病人的血清和血浆中,并且随着生理状况、疾病的类型和病程的不同而表达异常。miRNA在组织和细胞中的表达具有严格的时空性和组织特异性,在不同病理生理状况下呈特征性表达。

外周血miRNA具有稳定性,在不同物种的血浆中均可检测到miRNA,其表达水平在同一物种不同个体间是一致的,且能抵抗4℃、-80℃低温冻融[2,3]。Arroyo等[4]发现miRNA在血液中的稳定性并非由于miRNA能抵抗血浆核糖核酸酶(R Nases),而是因为大多数miRNA与蛋白复合体结合,其中主要是Argonaute2蛋白复合体,这些蛋白复合体对miRNA具有保护作用,从而使miRNA具有稳定性。组织细胞内外的miRNA表达图谱是不一样的,miRNA选择性地从组织细胞释放到外周血中。外周血中miRNA的稳定性及其选择性对其成为疾病诊断的潜在性无创生物标志物起着重要的作用[5]。

2008年Chim和同事率先开始将miRNAs作为妊娠并发症的生物标记的研究工作。当时已知的主要在胎盘表达的miRNAs大约有100种[6],但是不知道胎盘来源的miRNAs能否在母血循环中检测到并用于诊断。在这个里程碑式的研究中,Chim等[7]设想血浆中大部分miRNAs来源于造血系统而与妊娠并不相关,所以他们比较了晚孕期胎盘组织中和对应的母血细胞中的157种miRNAs,证明出现在胎盘中的34种miRNAs浓度高于孕母血细胞中的10倍。重要的是,研究者验证了胎盘中4种极其丰富的miRNAs(miR-141,miR-149,miR-299-5p,and miR-135b)可以在孕妇血浆中检测到,但在产后母体血浆中检测不到,进一步证实他们来源于胎盘。在妊娠妇女血浆中发现胎儿的循环miRNA,而且母亲血浆中的胎儿miRNA在分娩前具有稳定性,故胎儿的循环miRNA可以作为产前诊断的分子标志。

随后,几个研究也证实胎盘特异miRNAs存在孕母血浆和血清中。Gilad等[8]研究表明孕妇血清中的miR-526a、miR-527、miR-520-5p表达水平明显高于非妊娠妇女,这种生理变化可用于判断女性是否怀孕。胎盘来源的核酸物质(DNA和RNA)最初设想是以凋亡小体的形式释放到母体循环中[9],而Luo等[10]报道了miRNAs是由人类胎盘合体滋养细胞通过外质体运输到母血循环,循环中的滋养细胞释放的miRNAs反映了妊娠的生理状态并可用于诊断。因为它们的浓度很可能反映组织特异的生理或病理状态,就此推断相关的miRNAs可能对妊娠并发症做出预测。

2 外周血miRNA检测技术

目前已经发展了多种有效的miRNA检测方法,根据研究目的和所取样本不同可以选择最适合的检测方法。RNA印迹(northern blot)是验证和确认miRNA的经典方法,但该方法繁琐并且灵敏度低,不适于临床大规模的筛选实验[11]。芯片技术(microarray)可以实现快速、高通量地检测,且可用于多个miRNA的检测[12],但结果是半定量的,灵敏度和重复性较差,一般多用于初筛,获得的结果通常需要N orthern blot和实时定量PCR进行验证,而芯片制作和检测所需的仪器设备也较昂贵。循环miRNA的定性检测可采用miRNA芯片技术。

实时PCR(RT-PCR)作为半定量或定量检测miRNA表达的常用实验方法[13],在研究miRNA表达的过程中不断得到改进。实时荧光定量PCR可以很精确地定量分析miRNA,是循环miRNA定量检测最常用而有效的方法。茎环(stemloop)实时定量RT-PCR是一项高特异度、敏感度的检测miRNA表达的实验技术,包括设计具有茎环结构的反转录引物和用miRNA荧光标记的特异分子探针进行实时PCR2个关键步骤[14]。Mitchell等[15]采用茎环的RT-PCR方法直接以血清为模板也能检测到miRNA分子,充分证明这种方法特异性和敏感性方面的优势。Gilad等[8]采用poly A加尾,用带有锚定引物RT-PCR,然后再用探针进行检测,同样获得稳定的miRNA分子。

3 miRNA在产科领域的应用

基于“成人疾病胎儿起源”学说[16],成人疾病可能由早期生命过程所决定,而寻找在孕期发现异常的方法即产前诊断或产前筛查对下一代健康有深远意义。孕妇血清中出现的生物标记如果相对无创且数量丰富,是最有价值的。循环核酸在母体血浆中的发现为非侵入性的产前诊断开创了可能。但研究发现循环DNA检测率低,特异性差,存在大量母体DNA的背景干扰;循环RNA虽易于检测,但容易降解,作为标记物缺乏稳定性。而循环miRNA有着作为临床标记物的足够的稳定性和特异性。最近几年对一些妊娠相关疾病的研究表明,作为妊娠相关疾病的无创生物标记,miRNAs是一种极有潜力的候选者。

为证明miRNAs与妊娠相关并发症有关,研究者曾采用两种互补的方法。开始第一种方法为患有感兴趣疾病孕妇与健康对照组的胎盘中miRNAs的浓度比较。有疾病相关差异的候选胎盘miRNAs通过miRNA微阵列芯片或第二代基因测序鉴定,然后由定量实时PCR确认。因为血浆和血清均为无创诊断样本,研究者随后检验它们是否出现在孕母血浆或血清中。第二种方法开始直接检测孕母血浆或血清,寻找与感兴趣妊娠并发症相关的miRN As的基因表达模式。通过这些方法验证的miRN As并不需要胎盘特异性表达,只要这些miRNAs的差异表达能够反映孕母的妊娠相关生理或病理状态。大量候选miRNAs已经被识别,它们中许多有希望成为特殊妊娠疾病的生物标记。

目前国内外文献报道的miRNA用于产前诊断研究,尤其妊娠相关疾病预测取得了一定成果。本文便作以介绍。

3.1 检测胎儿染色体异常 唐氏综合征(Dow n syndro me,DS)胎儿表达其特异性的miRNA[17],而部分DS胎儿特异性miRNA又在胎盘特异性表达。因此,孕妇血浆中miRNA可作为胎儿D S无创产前诊断的标志物。国内李艳丽等[18]选择在DS胎儿脑组织和心脏组织高表达的miR-125b-2作为研究目标,分别检测正常孕妇和异常孕妇血清中miR-125b-2的水平。研究结果显示唐氏筛查高危孕妇血清miR-125b-2水平高于妊娠中期孕妇,最终确诊为异常的孕妇血清miR-125b-2水平明显高于正常孕妇。因此,miR-125b-2可以单独或与其他检测指标联合使用,用于无创产前诊断。此外,10例异位妊娠孕妇血清miR-125b-2的水平也明显高于正常孕妇。miR-125b-2有可能成为区别正常妊娠与异位妊娠的一个有用分子标记物。

3.2 筛查胎儿结构异常 先天性心脏病是一种常见的婴儿出生缺陷。虽然目前反映胎儿先天性心脏病的筛查指标有多种,如颈半透明度(N T)、β-hC G和P APP-A,但这些指标有非特异且假阳性率高。而与心脏发生相关的特异性miRNA已被发现,并且这些特异性miRNA与胎盘miRNA的表达有关,而且还出现在妊娠妇女的外周血中,这预示着妊娠妇女的外周血miRNA可作为胎儿先天性心脏病诊断的潜在性生物标志物[19]。而中国医科大学一项研究[20]首次将怀有神经管缺陷胎儿的孕妇与健康对照孕妇作比较,其血清中6种miRNAs的表达不同,这些miRNAs可作为产前监测胎儿有无神经管缺陷的早期无创分子标记。

3.3 预测子痫前期 研究表明,子痫前期(preeclam psia,PE)发生时,也会经历如细胞凋亡等病理生理过程。因此,推测miRNA在PE的病理过程中可能发挥了至关重要的作用。2007年,Pineles等[21]运用微阵列技术分析了PE患者与正常妊娠妇女胎盘组织中157种miRNAs的表达变化情况,发现miRNA在这两组人群中存在明显差异。这一研究结果首次证实miRNA与产科疾病密切相关。Zhu等[22]用芯片技术和实时荧光定量PCR研究发现在先兆子痫孕妇胎盘中有34种miRNAs表达异常,并且在先兆子痫孕妇胎盘中miRNA家族在人染色体19q13.42,13q31.3,xq26.2,xq26.3和14q32.31表达异常,表明先兆子痫和其它病理情况下涉及到的胎盘中miRNA的异常也可以在母体血浆中反映。而Enquobahrie等[23]运用基因芯片技术对20例PE患者及20例正常妊娠妇女胎盘组织的miRNA进行检测发现,相较于正常妊娠妇女,PE患者胎盘组织中有8种miRNA表达异常:miRNA-210上调,miRNA-328、-584、-139-5p、-500、-1247、-34c-5p、-1下调,此项结果与以前的研究相一致[21]。同时Enquobahrie等[23]认为,miRN A-210主要参与内皮细胞对低氧状态的应答、毛细血管样结构的形成以及血管内皮生长因子(V E G F)趋化的细胞迁移等过程,其表达量增高可能主要与胎盘低氧状态相关。而miRNA-1主要通过对钙调节蛋白m RNA、Mef2a以及Gata4的负相调控影响钙信号。这些证据均提示,miRNA可以作为无创性产前诊断的分子标记物,用于PE早期的预测。

3.4 预测胎儿生长受限 Mouillet等[24]发现胎盘滋养层miRNA是通过缺氧进行调节的,而这些miRNAs与妊娠妇女血清中的胎儿miRNAs密切相关;他们检测和比较正常妊娠妇女与胎儿生长受限(fetal growth restriction,FGR)的妊娠妇女血清中的胎儿miRNA,发现后者的胎儿miRNA水平明显增高。最近,Maccani等的研究报道了胎盘miRN A浓度下降与低出生体重直接相关[25]。107名足月初产妇的胎盘所表达的6种miRNAs(miR-16、miR-21、miR-93、miR-135b、miR-146a和miR-182),在低出生体重儿的胎盘中miR-16和miR-21的表达水平明显降低。此外,logistic回归分析肯定了miRNAs的表达与小于胎龄儿(small for gestational age,SGA)之间的关系,证明胎盘miR-16的低表达可预测超过4倍的机率为SGA。如果胎盘中miR-16和miR-21均为低表达,则为SGA的机率更大。进一步研究与胎儿生长有密切相关的miRN As的表达,将有助于理解其作为FGR标记的潜在机制及其临床的使用潜力。

3.5 预测妊娠期糖尿病 妊娠期糖尿病(gestational diabetes mellitus,G D M)与母儿结局密切相关,对妊娠期糖尿病做出早期风险评估将有助于改善母儿结局。Zhao等完成了一个多级研究[26],旨在调查25~28孕周时诊断G D M之前血清miRNA的预测能力,在初始阶段,他们使用低密度阵列芯片(taq man low density array chips),继以实时PCR来系统筛选16~19孕周之间收集的血清中的miRN As。结果显示将要发展为G D M的孕妇血液中有3种miRNAs(mir-29a、mir-222和miR-132)浓度明显低于对照组。该研究阐明了miRNAs作为G D M预后指标的潜在能力,但其临床应用仍然需要进一步的调查和优化。

3.6 预测早产 早产(preterm delivery,P T D)定义为满28孕周而不足37孕周之前的分娩。早产症状为非特异性,并难以预测哪个孕妇会早产。最近两项研究证明早产孕妇的miRNAs表达不同。Montenegro等用miRNA微阵列分析发现早产组与足月产组39种miRNAs在绒毛膜上的表达有差异性,实时PCR证实miR-338、miR-449、miR-136,、和miR-199a足月时是减少的[27]。另一个研究显示早产组的胎盘一部分miRNAs(如miR-15b、miR-181a、miR-210、miR-296-3p、miR-483-5p和miR-493)的表达发生了变异[28]。在血清中发现这些miRNAs并用于预测早产还有待观察。

3.7 预测复发性流产 复发性流产(recurrent pregnancy loss,RPL)发生在0.4%~1%的妊娠中,定义为在3次或以上临床可见的妊娠(异位妊娠、宫内妊娠,但不包括生化妊娠)20孕周之前发生的流产。RPL的病因经常不清楚,也缺乏诊断证据及治疗方法。基因异常是导致RPL的一个重要因素,某些单核甘酸多态性(single-nucleotide polym orphisms,SNPs))也与RPL相关。两项最近的研究调查了miRNA多态性与RPL的联系。一个研究比较了217个RPL患者和431个正常对照中初级miRNA(pri-miR)-125a上的2个不同的等位基因,miR-125a的产物改变增加了中国汉族中一个人群发生RPL的风险[29]。在另一个病例对照研究中,研究人员发现4个miRNA前体多态性(miR-196a2C C,miR-499 AG+G G,miR-196a2C C/miR-499 AG+G G com bination)和韩国妇女RPL的发生有关[30]。如果确定在不同种族人群中这些miRN A多态性和RPL之间存在的相似联系将会更有意义。

4 结语与展望

miRNAs广泛存在于外周血中,具有稳定性和释放的选择性,其与某些生理病理现象密切相关,对疾病的发生、发展起着重要作用,而且采集外周血的标本相对方便及具有无创性。因此,外周血miRNA可望成为新的疾病早期诊断、鉴别诊断及预后判断的无创性生物标志物。

miRNAs作为一种新型的无创性产前诊断指标,发展前景良好。但是由于相关研究只是在小范围内进行,因此仍需要进行更多大规模的研究来提供证据。虽然对血清中含有许多来源于不同组织和器官miRNAs已经很明确,但循环miRNAs应用于产前诊断,肿瘤及其他疾病诊断方面还处于初级阶段,单个的miRNA标记物在不同的病理条件,即使是相同的疾病,使用一种标记物也是不可靠的方法;而且目前实验样本量较小,检测方法繁琐且价格昂贵,这些都不利于临床应用。如果建立一套标准miRNA标记物表达谱,随着技术的进步,在不久的将来,不仅血清或血浆中miRNA,其它体液中的miRNA,如尿液和唾液中的miRNA也可作为标记物应用于临床,甚至为临床多种疾病提供治疗靶点。

目前大部分研究只是从外周血miRNA的表达上调或下调来预测某种或某些疾病,对疾病诊断的特异性研究很少。如果能对其特异性、准确性和规范化方法等全面深入研究,外周血miRNA作为新的疾病诊断的无创性标志物的预测就将变为现实。相信随着分子生物学技术的不断发展,孕妇血浆及血清中的胎儿游离核苷酸,特别是miRNA必将成为无创伤性产前遗传病诊断最具临床应用价值的标记物。

[1]Lee R C,Feinbau m R L,Am bros V.The C.elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense com plementarity to lin-14[J].Cell,1993,75(5):843-854.

[2]Chen X,Ba Y,Ma L,et al.Characterization of microRNAs in seru m:a noveLClass of bio markers for diagnosis of cancer and other diseases[J].Cell Res,2008,18(10):997-1006.

[3]Lodes MJ,Caraballo M,Suciu D,et al.Detection of cancer with seru mmiRNAs on an oligonucleotide microarray[J].PloS One,2009,4(7):e6229.

[4]Arroyo JD,Chevillet JR,Kroh E M,et al.Argonaute2 complexes carry a population of circulating microRNAs independent of vesicles in hu man plasma[J].P N AS,2011,108(12):5003-5008.

[5]Pigati L,Yaddanapudi SC,Iyengar R,et al.Selective release of MicroRNAspecies from normal and malignant ma m mary epitheliaLCells[J].P LoS O ne,2010,5(10):e13515.

[6]Liang Y,Ridzon D,W ong L,et al.Characterization of microRNAexpression profiles in normal hu man tissues[J].B MC Geno mics,2007,8:166.

[7]Chim SSC,Shing T K F,H ung E C W,et al.Detection and characterization of placental microRNAs in maternal plasma[J].Clin Chem,2008,54(3):482-490.

[8]Gilad S,Meiri E,Yogev Y,et al.Seru mmicroRNAs are pro mising novel bio markers[J].PLoSO N E,2008,3:e3148.

[9]Ishihara N,Matsuo H,Murakoshi H,et al.Increased apoptosisin the syncytiotrophoblastin hu man term placentas complicated by either preeclam psia orintrauterine growth retardation[J].Am J O bstet Gynecol,2002,186(1):158-166.

[10]Luo SS,Ishibashi O,Ishikawa G,et al.H u man villous trophoblasts express and secrete placenta-specificmicroRNAs into maternaLCirculation via exoso mes[J].Biol Reprod,2009,81(4):717-729.

[11]Pall G S,H amilton AJ.Im proved northern blot Method for enhanced detection of small RNA[J].Nat Protoc,2008,3(6):1077-1084.

[12]Liu C G,Calin G A,Meloon B,et al.An oligonucleotide microchip for geno me-wide microRNAprofiling in hu man and m ouse tissues[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2004,101(26):9740-9744.

[13]Resnike K E,Alde H,H agan JP,et al.The detection of differentially expressed microRNAs from the seru m of ovarian cancer patients using a novel real-time PCRPLatform[J].Gynecologic Oncology,2009,112:55-59.

[14]Zhang H H,W ang XJ,Li G X,et al.Detection of let-7a microRNAby real time PCR in gastric carcino ma[J].W orld Gastroenterol,2007,13(20):2883-2888.

[15]Mitchell PS,Parkin R K,Kroh E M,et al.Circulating microRN As as stable blood-based markers for cancer detection[J].Proc Natl Acad Sci U SA,2008,105(30):10513-10518.

[16]Morley R.Fetal origins of adult disease[J].Semin Fetal Neonatal Med,2006,11(2):73-78.

[17]K uhn D E,N uovo GJ,Martin MM,et al.H u m m chro m oso me 21-derivedmiRNAs are overexpressed in dow n syndro me bnins and hearts[J].Biochem Biophys Res com m un,2008,370(3):473-477.

[18]李艳丽,柳芳,梁红艳,等.母体血清miR-125b-2直接检测应用于无创产前诊断的相关研究[J/C D].中华临床医师杂志(电子版),2012,6(15):4328-4331.

[19]Yu Z,Han S,H u P,et al.Potential role of maternal seru m microRNAs as a bio marker for fetaLCongenital heart defects[J].Med Hypotheses,2011,76(3):424-426.

[20]Hui Gu,H ui Li,Li Zhang,et al.Diagnostic role of microRNAexpression profile in the seru m of pregnant wo men with fetuses with neural tube defects[J].J Neurochem,2012,122:641-649.

[21]Pineles B L,Ro mero R,Montenegro D,et al.Distinct subsets of microRNAs are expressed differentially in the hu man placentas of patients with preecla m psia[J].Am J O bstet Gynecol,2007,196(3):261.e1-6.

[22]Zhu X M,H an T,Sarqent IL,et al.Differential expression profile ofmicroRNAs in hu man placentas from preecla m ptic pregnancies vs normal pregnancies[J].Am J O bstet Gynecol,2009,661:1-7.

[23]Enquobahrie D A,Abetew D F,Sorensen T K,et al.Placental microRNAexpression in pregnancies com plicated by preeclam psia[J].Am J O bstet Gynecol,2011,204(2):178.e12-21.

[24]Mouillet JF,Chu T,H ubeLC A,et al.The levels of hypoxiaregulated microRNAsin plasma of pregnant wo men with fetal growth restriction[J].Placent,2010,31(9):781-784.

[25]Maccani MA,Padbury JF,Marsit CJ.miR-16 and miR-21 expression in the placenta is associated with fetal growth[J].P LoS O ne 2011;6(6):e21210.

[26]Zhao C,Dong J,Jiang T,et al.Early second-trimester seru mmiRNAprofiling predicts gestational diabetesmellitus[J].P LoS O ne 2011;6(8):e23925.

[27]Montenegro D,Ro mero R,Kim SS,et al.Expression patterns of microRNAs in the chorioa m niotic mem branes:a role for microRNAs in hu man pregnancy and parturition[J].J Pathol,2009,217(1):113-121.

[28]Mayor L K,Toloubeydokhti T,Cruz AC,et al.Expression profile of microRNAs and m RNAs in hu man placentas from pregnancies com plicated by preeclam psia and preterMLabor[J].Reprod Sci,2010,18(1):46-56.

[29]HuY,Liu C M,Qi L,et al.T wo com m on SNPs in pri-miR-125a alteRThematuremiRNAexpression and associate with recurrent pregnancy lossin a H an-Chinese population[J].RNABiol,2011,8(5):861-872.

[30]Jeon YJ,Choi Y S,Rah H,et al.Association study of microRNApoly m orphismswith riskof idiopathic recurrent spontaneous abortion in K orean wo men[J].Gene,2012,494(2):168-173.

编辑:郁君

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10.13470/j.cnki.cjpd.2014.02.007

2014-05-06)

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