时间:2024-09-03
雷 可,雷 涛,朱 萌,邱 容,王 倩,梁卓文
周围神经损伤后虽然具有一定的再生能力,但是再生能力有限,在大部分再生神经重新到达并支配靶组织之前,远端靶组织就已发生萎缩[1-2]。 因此,如何加快神经轴突生长及功能恢复是困扰人们的难题。 嗅鞘细胞(olfactory ensheathing cells,OECs)是一种特殊的嗅神经系统胶质细胞[3],大量的研究表明,OECs 能够促进中枢以及外周神经系统神经再生[4-6]。 然而,细胞移植至神经损伤区域将面临缺氧微环境,进一步影响移植细胞活性,严重制约细胞移植的神经修复效果[7]。 因此,改善OECs 移植区域的局部微环境供氧非常必要。组织工程材料的发展,为解决这一问题带来了希望。 全氟碳化物(perfluorocarbons,PFCs),如全氟三丁胺(perfluorotributylamine,PFTBA)能够高效提升组织材料中的氧含量,作为血液替代品广泛应用[8-9]。 多项研究表明,在低氧条件下,PFTBA 能提高不同类型的细胞活性及存活率[7,10]。 因此,PFTBA 成为一种有吸引力的补充材料,能够为移植在损伤区域的OECs 提供持续氧供,打破其缺氧微环境。 本研究将PFTBA 作为材料与Matrigel 混合为携氧材料与OECs 混合后植入聚己内酯(polycaprolactone,PCL)静电纺丝神经导管。 在体内条件下测试该复合物神经导管对大鼠坐骨神经1 cm 缺损的修复效果,为其在周围神经再生领域的应用提供实验基础。
1.1 材料 选取6 ~8 周龄雄性SD 大鼠,10 只用于提取OECs,96 只用于体内实验。 所有大鼠均由空军军医大学实验动物中心提供,本实验已通过空军军医大学动物实验伦理委员会批准(KY20172005-1)。DF12(DMEM 和Ham′s F12 的1 ∶1混合物)细胞培养基、胎牛血清、青-链霉素(美国Gibco 公司);胰蛋白酶、磷酸盐缓冲液、Triton X-100(北京索莱宝科技有限公司);左旋多聚赖氨酸(poly-L-lysine,PLL)、聚ε-己内酯(ε-caprolactone,PCL)、4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)(美国Sigma-Aldrich 公司);多聚甲醛(上海碧云天生物技术有限公司);进口山羊血清工作液(北京中杉金桥生物技术有限公司);SMA 单克隆抗体、p75NTR单克隆抗体、NF160 单克隆抗体(英国Abcam 公司);山羊抗鼠Cy3、山羊抗兔FITC、山羊抗鼠FITC(北京康为世纪生物科技有限公司)。细胞培养瓶(广州洁特生物过滤股份有限公司);石蜡切片机(德国LEICA 公司);共聚焦显微镜(日本Nikon 公司);透射显微镜(日本Hitachi 公司);光学显微镜(日本Olympus 公司)。
1.2 方法
1.2.1 实验分组 SD 大鼠60 只,随机分为3组:自体神经移植组,PFTBA-OECs 神经导管组(PFTBAOECs组);OECs 神经导管组(OECs组),每组20 只。
1.2.2 OECs 的提取以及纯化 依照Goulart 等[11]总结的方法并加以少许改动,分离6 ~8 周龄的雄性SD 大鼠嗅球,并从中剥取嗅神经层及嗅粘膜。0.25%胰蛋白酶消化20 min。 终止消化,1000 r/min 离心5 min,使用含有10%胎牛血清的DF12 培养基重悬细胞,接种;36 h 后,取未贴壁的细胞悬液,接种至PLL 包被的培养瓶中,正常培养基继续培养7 d,贴壁细胞用于后续实验。
1.2.3 OECs 鉴定 纯化后的OECs,固定后进行免疫荧光染色,对SMA 和p75NTR进行特异性免疫荧光标记。 拍摄选取随机区域并计数SMA 和p75NTR均阳性细胞数量及DAPI 标记细胞核数量,两者之比计算OECs 纯度。
1.2.4 移植后细胞活性测试 使用慢病毒转染OECs 细胞[12],使其表达绿色荧光蛋白,即GFP-OECs。术后3,7,14,28 d,将各组大鼠(每个时间点,每组大鼠9 只)神经移植物,纵断面冰冻切片,在荧光显微镜下对GFP-OECs 进行计数。 每个切片随机选取5 个视野(1000 μm×300 μm)用于分析。
1.2.5 坐骨神经再生评估 取各组大鼠坐骨神经移植物石蜡切片。 对切片进行免疫荧光染色,特异性标记NF200 和S100。 通过共聚焦显微镜收集免疫荧光染色结果。
1.2.6 再生神经轴突髓鞘化评估 将各组神经移植物处理后超薄切片,透射电镜观察并计算再生轴突的髓鞘厚度。
1.2.7 功能恢复评估 计算坐骨神经指数(sciatic function index,SFI)评估坐骨神经损伤后功能恢复,术后4、8 周,分别收集各组大鼠5 只可进行足迹测量。 用以计算SFI 值。
1.3 统计学处理 应用SPSS 24.0 统计学软件进行分析,计量资料以均数±标准差(±s)表示,两组间比较使用t检验,多组间比较使用单因素方差分析;计数资料采用率表示,行χ2检验;P<0.05 为差异有统计学意义。
2.1 实验动物数量分析 自体神经移植组,OECs
神经导管组,PFTBA-OECs 神经导管组大鼠均存活,全部进入后续实验数据分析。
2.2 OECs 纯度 OECs 经过纯化后进行p75NTR和SMA 双标免疫荧光染色(图1)。 OECs 纯度(%)=p75NTR和SMA 双标染色均阳性细胞数量及DAPI 标记的同一视野细胞核数量。 本研究所测得的OECs纯度为(95.8±2.1)%。
图1 OECs 免疫荧光染色鉴定
2.3 PFTBA 对移植OECs 成活率的影响 术后3、7、14、28 d 分别对GFP-OECs 计数。 PFTBA-OECs组GFP-OECs 数量在术后每个统计时间点均明显多于OECs组(P<0.05),图2。
图2 PFTBA 在体内条件下对OECs 存活率的影响
2.4 PFTBA-OECs 对神经再生的影响 术后4 周免疫荧光染色结果显示,自体神经组和PFTBAOECs组再生神经纤维在损伤远端也有分布,雪旺细胞数量也明显多于OECs组(P<0.05),图3。
2.5 PFTBA-OECs 对再生轴突髓鞘化的影响 术后4 周再生神经组织的透射电镜结果显示,PFTBAOECs组再生神经轴突的数量明显多于OECs组(P<0.05),与自体神经移植组接近;PFTBA-OECs组髓鞘厚度明显优于OECs组(P<0.05),图4。
2.6 PFTBA-OECs 对坐骨神经损伤后功能恢复的影响 术后2、4、8 周SFI 显示PFTBA-OECs组SFI值与自体神经移植组接近(P>0.05),明显优于OECs组(P<0.05),图5。
图3 PFTBA-OECs 对大鼠坐骨神经再生的影响
图5 术后2、4、8 周大鼠SFI 值统计图
OECs 能够促进中枢神经系统以及外周神经系统神经的再生以及生长[13-15]。 尽管OECs 移植能够在一定程度上促进神经的再生以及功能的恢复,但是移植后,局部微环境的恶化[16],如缺氧、炎性反应等,致使移植细胞存活率低、生物活性差,严重制约了OECs促神经修复作用的发挥[7]。 因此,为移植细胞设计持续的供氧方案对于提高神经修复非常必要。
大量研究表明PFTBA 能够提高多种细胞在缺氧状态下的细胞活性。 因此,PFTBA 为组织工程修复神经缺损的局部缺氧提供了解决方法。 本研究发现复合有PFTBA 的OECs 在神经导管内存活率显著提高。 在大鼠坐骨神经损伤模型中发现PFTBA 能够有效打破移植局部缺氧微环境,显著促进再生轴突的生长,为再生神经轴突营造良好的再生微环境。
本研究还发现PFTBA-OECs 能够提升再生神经轴突的髓鞘化程度。 各处理组大鼠SFI 值表明,PFTBA-OECs 处理组大鼠的神经功能恢复情况明显优于OECs 处理组。 本研究的缺点是尚未就PFTBA对细胞活性影响促进神经再生的具体机制进一步探究。 下步实验将进一步深入了解PFTBA 促进神经再生的具体分子机制。
综上所述,本研究证实了PFTBA 在OECs 移植以及组织工程方法修复神经缺损过程中的有效性,为解决组织修复材料局部缺氧提供了解决方案,为进一步提高组织工程方法修复神经损伤疗效提供了新视野。
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