时间:2024-09-03
于 鹏,王奕文,段宝鑫,薛友林,谷学军*
(1辽宁大学 稀散元素化学研究所,辽宁 沈阳110036;2辽宁大学 轻型产业学院,辽宁 沈阳 110036)
硒是人体所需的必不可少的稀有元素,研究证明硒具有提高免疫力、抗氧化、抗肿瘤等功能[1,2].多糖是一种至少有10种单糖通过糖苷键连接而成的多聚糖[3,4].将硒与多糖有机结合后形成硒多糖,其抗氧化、抗肿瘤的效果会更好.在分离纯化硒多糖的过程中,甘薯内棕色色素会加深硒多糖溶液体系的颜色,污染纤维素阴离子交换柱的填料;甘薯内存在大量的蛋白质,蛋白质会挂在阴离子交换层析柱的填料上,影响硒多糖的纯化,所以应尽可能脱除甘薯粗硒多糖内的蛋白质[5].
传统的Sevag法是使用氯仿和正丁醇协同作用达到脱蛋白的效果[6],此方法所使用的化学试剂对环境有一定的污染.而聚酰胺对环境无污染并可重复使用,所以本实验使用聚酰胺为填料的柱层析方法脱除色素和蛋白质,使用单因素考察法探究脱色和脱蛋白的工艺参数.
植物材料:甘薯(sweet potato)由华实生态实验基地以1 mg/mL的亚硒酸钠自主人工生物施硒法培育而成.
主要试剂:无水乙醇、考马斯亮蓝G-250、重蒸苯酚、浓硫酸、牛血清蛋白、无水乙醇、氢氧化钠、盐酸、浓硫酸、聚酰胺.
主要仪器:真空冷冻干燥机、旋转蒸发仪,中压玻璃层析柱(25 mm×600 mm).
自主培育的富硒甘薯→清洗干净→切成薄片→鼓风干燥箱内烘干→粉碎机粉碎→过60目筛→石油醚回流脱脂→抽滤→浸提3 h→离心浸提液30 min→收集上清液→浓缩至原体积的1/5→乙醇沉淀(保证体系乙醇浓度为75%)→离心醇沉液30 min→收集沉淀→丙酮和无水乙醇反复洗涤三次→复溶→蒸馏水回流透析48 h→真空冷冻干燥→甘薯粗硒多糖.
工艺流程:复溶后的粗硒多糖→加入到聚酰胺层析柱中→调节流速→自动部分收集器收集过滤后的样品→浓缩;
本实验最佳上样量的确定:分别取5份甘薯粗硒多糖溶液,固定上样体积为75 mL,上样量为150、300、450、600、750 mg,吸附时间为30 min,洗脱速率为3 mL/min;最佳上样体积的确定:分别取3份甘薯粗硒多糖溶液,固定上样量为600 mg,上样体积分别为60、75、90 mL,吸附时间为30 min,洗脱速率为3 mL/min;最佳吸附时间的确定:分别取5份甘薯粗硒多糖溶液,固定上样量为600 mg,上样体积为75 mL,吸附时间分别为5、10、20、30、60 min,洗脱速率为3 mL/min.最佳洗脱速率的确定:分别取5份甘薯粗硒多糖溶液,固定上样量为600 mg,上体积为75 mL,吸附时间为30 min,洗脱速率分别为1.5、3、4.5、6、9 mL/min.
取甘薯粗硒多糖样品复溶后,与紫外分光光度计在200~800 nm进行全波长扫描,在可见光区选择最大吸收峰的波长即为检测波长.计算公式为:脱色率(%)=(脱色前的吸光度-脱色后的吸光度)/脱色前的吸光度×100%.
采用苯酚-硫酸法测脱色脱蛋白前后的总糖含量,苯酚-硫酸法的具体步骤如下:取固体苯酚5 g于棕色容量瓶内,定容至100 mL后水浴加热,使苯酚充分溶解,配成5%的苯酚,放到4 ℃恒温内保存.精确称取5 mg充分烘干后的分析纯D-无水葡萄糖标准品定容至50 mL配成0.1 mg/mL的葡萄糖标准液,并存放于4 ℃的环境内保存.吸取葡萄糖标准液 0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mL于相应的具塞试管中,用超纯水补齐至0.5 mL,依次分别加入0.5 mL 5%的苯酚,然后迅速加入2.5 mL 98%的浓硫酸,40 ℃水浴30 min后放置室温.在490 nm处测吸光度,并绘制葡萄糖标准曲线,如图1所示.利用公式y=10.56x+0.011 2计算总糖含量,多糖保留率(%)=脱蛋白后的多糖含量/脱蛋白前的多糖含量×100%.
采用考马斯亮蓝G-250法测定甘薯粗硒多糖的蛋白质含量,考马斯亮蓝G-250法的具体方法如下:精确称取考马斯亮蓝G-250标准品100 mg溶于50 mL 95%的乙醇中,随后加入100 mL 85%的磷酸,最后用蒸馏水稀释至1 000 mL,配成0.01%的考马斯亮蓝试剂并在4 ℃下存于棕色瓶中备用.精确称取标准牛血清蛋白10 mg并定容至100 mL的容量瓶内,配置0.1 mg/mL的标准牛血清蛋白溶液并存放于4 ℃的环境内备用.分别精确吸取蛋白质标准溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL置于10 mL具塞试管中,分别加入蒸馏水,将体系补齐至1 mL,加入考马斯亮蓝G-250溶液5 mL混匀,放置10 min,并于595 nm处测其吸光度并绘制标准蛋白质曲线,如图2所示.利用公式y=5.205x+0.099 3测蛋白质浓度,蛋白质的脱除率(%)=(脱蛋白前的吸光度-脱蛋白后的吸光度)/脱蛋白前的吸光度×100%.
图1 葡萄糖标准曲线
图2 标准蛋白质曲线
根据图3分析得知,当固定上样体积为75 mL,吸附平衡时间为30 min,洗脱速率为3 mL/min时,伴随着上样量逐渐增加的同时,总糖保留率呈递增趋势,而脱色率和脱蛋白呈微小递减趋势.理想效果是总糖保留率高而脱色和脱蛋白率也高.综上因素,选择甘薯硒多糖的上样量为600 mg.
根据图4分析得知,当固定上样量为600 mg,洗脱时间为30 min,吸附平衡速率为3 mL/min时,随着上样体积的不断升高,脱色率、脱蛋白率和总糖保留率没有显著的变化,上样体积大会增加含糖具塞试管的数量,同时会增加后期浓缩操作的误差.综上因素,选择甘薯硒多糖的上样体积为60 mL(2/5倍柱体积).
图3 上样量的影响
图4 上样体积的影响
根据图5分析得知,当固定上样量为600 mg、上样体积为75 mL、洗脱速率为3 mL/min时,随着吸附平衡时间的增加,总糖保留率在5~20 min区间内呈递减趋势,而脱色率和脱蛋白率在5~20 min内呈递增趋势,20 min以后,总糖保留率、脱色率、脱蛋白率均没有显著的变化.为确保总糖保留率、脱色率和脱蛋白率高,综上因素,选择甘薯硒多糖的吸附平衡时间为20 min.
根据图6分析得知,当固定上样量为600 mg、上样体积为75 mL、吸附平衡时间为30 min时,随着脱色速率的提高,总糖保留率持续上升,而脱色率和脱蛋白率逐渐下降.为确保总糖保留率、脱色率和脱蛋白率,综上因素,选择甘薯硒多糖的洗脱速率为4.5 mL/min.
图5 吸附平衡时间的影响
图6 洗脱速率的影响
综上研究,选择上样量为600 mg、上样体积为60 mL(2/5倍柱体积)、吸附平衡时间为20 min、洗脱速率为4.5 mL/min为本实验的工艺参数时,其脱色率为85.5%、脱蛋白率76.2%、总糖保留率68.2%.由于硒多糖的生物活性可决定其抗氧化和抗肿瘤的活性[7],因此最大程度的保护甘薯硒多糖活性不被破坏并绿色环保,是聚酰胺柱层析法脱蛋白工艺研究的目的所在.
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