时间:2024-05-14
□ 许 瑶 安徽省食品药品检验研究院
茶叶中草酸含量的测定
□ 许 瑶 安徽省食品药品检验研究院
采用反相高效液相色谱法检测铁观音中草酸的含量。结果表明:采用C18色谱柱,在流动相为甲醇:0.02%(NH4)2HPO4溶液=5:95,检测波长为197 nm,柱温25 ℃,进样量20 µL,流速0.8 mL/min的色谱条件下,检测铁观音中草酸含量为0.27%。通过重复性试验、稳定性试验和加样回收实验来验证结果的稳定性和可靠性。本实验峰面积和浓度之间有良好的线性关系,R2=0.999 6。回收率范围为,RSD=1.09%~1.87%。
茶叶;草酸;反相高效液相色谱
草酸以草酸盐的形式普遍存在于大多数的植物中,其中在蔬菜、水果和饮品中含量很高,而它其实也是一种致命的危险的化学物质[1]。人若口服草酸即发生胃肠道炎、虚脱、抽搐和休克等症状以至死亡。吸入草酸蒸汽者会发生慢性中毒,而且草酸还会与人体内的Ca2+形成结石,对人身体造成伤害。草酸存在于很多食品中,其中茶叶中就含有较多的草酸[2]。
1.1 材料与仪器
草酸标准品、超纯水、磷酸氢二铵、铁观音、甲醇、高效液相色谱仪。
1.2 色谱条件
本实验采用高效液相色谱仪带紫外检测器,色谱柱为C18色谱柱,流动相为甲醇:0.02%的(NH4)2HPO4=5:95,检测波长为197 nm,柱温25 ℃,进样量 20 µL,流速 0.8 mL/min。
1.3 样品制备
1.3.1 标准品溶液的制备
精密称取草酸标准品25.00 mg,置于25 mL的容量瓶中,加入超纯水定容,摇匀使其充分溶解,逐级稀释后得0、20、100、200L、300、400、500 µg/mL的标准溶液。
1.3.2 供试品溶液的制备
精密称取待测茶叶1.000 0 g,分别加入50 mL沸水,浸泡20 min后倒出上层溶液,离心取上清液,过25 µm的微孔滤膜后,用HPLC分析。
1.4 草酸含量的测定
按照1.2所提供的色谱条件,来测定茶叶样品中草酸的峰面积。利用回归方程计算草酸浓度。草酸含量=(草酸浓度×提取液体积)/茶叶样品质量×100%
表1 回收率试验数据记录及处理
2.1 检测波长的确定
通过实验,用紫外可见分光光度计对100 µg/mL的草酸溶液进行扫描,表明,在197 nm处有最大吸收峰,所以确定HPLC的检测波长为197 nm。
2.2 样品浸泡时间的确定
用沸水浸泡好茶叶后,分别在10、20、30、40、50、60 min的 时 间点处取出上清液,用高效液相色谱检测峰面积,依次为711.13、1000.75、1125.25、1027.38、1025.74、1021.36 mv.sec。从节约时间方面考虑,确定30 min为最佳浸泡时间。
2.3 线性关系的考察
用高效液相色谱仪测定草酸标准溶液峰面积。以浓度(µg/mL)为横坐标,峰面积(mv.sec)为纵坐标,绘制标准曲线。结果表明,在0~500 µg/mL的范围内,草酸标准品的浓度与峰面积有良好的线性关系,即Y=33.405X+749.32,R2=0.999 6。
2.4 精密度试验
准确吸取300 µg/mL的草酸标准品溶液20 µL,重复进样6次,所得峰面积数据表明,相对标准偏差为1.2%,小于2.0%,说明仪器的精密度良好。
2.5 稳定性试验
按照1.3.2所示方法配置供试品溶液,分别在0、1、2、4、8、12 h后注入高效液相色谱仪中,所测结果数据基本一致,RSD=1.2%。说明供试品溶液在12 h内基本稳定。2.6 样品含量的测定
将茶叶样品按照1.3.2所示方法来测定草酸的含量。通过标准曲线计算,草酸含量为0.27%。
2.7 回收率实验
取同一已知含量的铁观音茶叶供试品溶液5份,分别加入一定量的草酸标准品。在同一色谱条件下测定草酸峰面积,若草酸的平均回收率在95%~105%,则认定检测方法可靠。回收率试验数据记录及处理,见表1。
草酸回收率=(加入草酸标准品后的含量-未加草酸标品的含量)/加入草酸的含量×100%
采用反相高效液相色谱法对铁观音中的草酸进行含量分析,结果表明,铁观音茶叶中草酸含量为0.27%。通过精密度试验、稳定性试验和加样回收试验来验证了检测方法的准确性。结果表明:该方法精确、简便,为草酸在茶叶中的含量的测定提供参考。参考文献
[1]张贵生.茶叶标准研究进展[J].茶叶通讯,2009(4):32-37.
[2]裴亭.高效液相色谱法测定茶叶中烟酸的含量[J].茶叶科学,2011(2):124-128.
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