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丹参通络解毒汤联合内皮祖细胞对心肌缺血再灌注损伤大鼠PI3K/Akt信号通路的影响

时间:2024-05-14

李彩云,肖青,李鑫辉,陈聪,杜建芳,王静雯,陈欣

湖南中医药大学中医学院,湖南 长沙 410208

急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)是威胁人类生命健康的主要疾病之一,早期恢复缺血心肌再灌注可显著提高患者存活率,但易引发心肌缺血再灌注损伤(myocardial ischemic reperfusion injury,MIRI)[1-2],因此研发MIRI的靶点药物对防治AMI具有重要意义。内皮祖细胞(endothelial progenitor cells,EPCs)具有较强的促血管生成和修复血管内皮功能[3]。Morishita等[4]研究表明,循环EPCs具有分化为成熟内皮细胞的能力,在心肌缺血和血管损伤时,EPCs可诱导血管生成和促进血管修复。中药干预可调控EPCs归巢、增殖及分化,并可增强其保护心肌的作用[5]。Li等[6]研究表明,丹酚酸A能增加EPCs数量,提高EPCs迁移能力,促进缺血心肌组织血管新生。另有研究表明,PI3K/Akt信号通路参与了MIRI引起的炎症和凋亡[7]。前期临床研究显示,丹参通络解毒汤可治疗冠心病不稳定型心绞痛[8],但有关丹参通络解毒汤保护心肌的作用机制尚未完全明了。本研究从PI3K/Akt信号通路观察丹参通络解毒汤联合EPCs对MIRI模型大鼠心肌损伤的影响,探讨其可能的作用机制,为研发MIRI的靶点药物提供实验依据。

1 材料与方法

1.1 药物及制备

丹参通络解毒汤(丹参15 g,玄参15 g,当归10 g,栀子15 g,黄连6 g,黄芪30 g),饮片由湖南中医药大学第一附属医院提供,常规煎煮、浓缩至含原药材3.5 g/mL,4 ℃冰箱保存备用。

1.2 动物

清洁级SD雄性大鼠,3~4周龄20只,体质量90~110 g;10~12周龄60只,体质量180~220 g,湖南中医药大学实验动物中心提供,动物许可证号SCXK(湘)2016-0002。常规饲养于湖南中医药大学实验动物中心SPF级动物房,室温20~25 ℃,相对湿度50%~60%,明暗12 h循环,普通词料喂养,自由摄食饮水。

1.3 主要试剂与仪器

内皮细胞基础培养基(EBM-2,美国Lonza公司,货号CC3156),LY294002(美国Sigma公司,货号S1105),p-PI3K一抗(美国Sigma公司,货号SAB1300436),p-Akt一抗(美国CST公司,货号AB1019),FITC标记兔抗大鼠CD133(北京中杉金桥生物技术有限公司,货号Abp52923),PE标记山羊抗大鼠血管内皮生长因子受体-2(VEGFR-2,美国Epitomics公司,货号2296-1)。RM-6280型生理信号采集系统(成都仪器厂),HZQ-QB型恒温振荡摇床(苏州威尔实验用品有限公司),GE-100型凝胶电泳仪(杭州大和热磁电子有限公司),IX71型倒置荧光显微镜(日本Olympus公司),DH-140型小动物呼吸机(上海奥尔特生物科技公司)。

1.4 内皮祖细胞分离、培养及鉴定

取3~4周龄SD大鼠,胫骨及股骨骨髓腔中采集细胞,密度梯度离心法及差数贴壁法分离EPCs,镜下观察细胞生长情况。免疫荧光染色鉴定EPCs,取培养第10~14日细胞,接种至24孔板,4%多聚甲醛固定爬片,加入FITC标记兔抗大鼠CD133和PE标记山羊抗大鼠VEGFR-2孵育过夜,滴加二抗孵育,DAPI染细胞核,倒置荧光显微镜下观察。

1.5 分组、造模及给药

将10~12周龄SD大鼠随机分为假手术组、模型组、EPCs组、丹参通络解毒汤组(中药组)、丹参通络解毒汤+EPCs组(联合组)、丹参通络解毒汤+EPCs+PI3K阻断剂组(阻断剂组),每组10只。参考文献[9]方法,采用左冠状动脉前降支结扎法制备MIRI大鼠模型:腹腔注射10%水合氯醛(3 mL/kg)麻醉并固定,气管切开处接小动物呼吸机,暴露胸腔,在左心耳根部1~2 mm处进针,结扎大鼠左冠状动脉前降支,心电图显示ST段弓背向上抬高,QRS波群改变,J点偏移超过0.1 mV,缺血区心肌颜色变白;结扎30 min后松开结扎线实现再灌注,ST段出现回落,可见梗死区心肌充血,表明再灌注成功,关闭胸腔。假手术组只穿线不结扎。EPCs组、联合组和阻断剂组大鼠术后尾静脉注射含1.0×106个EPCs/pLVX-IRES-ZsGreen Vector的PBS 1 mL,其余各组大鼠尾静脉注射1 mL PBS;阻断剂组大鼠尾静脉注射LY294002稀释液(0.3 mg/kg)[10],中药组、联合组和阻断剂组大鼠术后每日予丹参通络解毒汤药液灌胃,参照人与大鼠体表面积换算给药剂量,相当于原药材18.125 g/kg,给药体积10 mL/kg,其余各组予等体积生理盐水灌胃,连续14 d。

1.6 心功能检测

切开大鼠气管,接呼吸机辅助通气后,动脉夹阻断右颈总动脉血流,并在其上剪一“V”字切口,将其充满肝素水,一端连接RM-6280型生理信号采集系统PE-50导管,插管至左心室,监测左心室形成压(LVDP)、左心室收缩压(LVSP)、左心室射血分数(LVEF)。

1.7 病理观察

取大鼠心肌组织,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,石蜡包埋,切片(4 μm),放入二甲苯中浸泡,行HE染色,封片,光学显微镜下观察心肌组织病理形态。

1.8 Western blot检测

取大鼠心肌组织,RIPA裂解液提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度,上样,SDS-PAGE后转膜至PVDF膜,加入稀释的p-PI3K、p-Akt一抗(1∶1 000),4 ℃孵育过夜,加入二抗(1∶3 000),37 ℃孵育1 h,化学发光液显影,凝胶成像系统采集图像,Image Pro Plus 6.0软件分析,以GAPDH为内参,计算各条带灰度值。

1.9 统计学方法

采用SPSS19.0统计软件进行分析。计量资料以±s表示,符合正态分布及方差齐性用方差分析,两两比较用LSD法,方差不齐用Games-Howell检验。P<0.05表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 内皮祖细胞鉴定

对分离培养的细胞进行鉴定,倒置荧光显微镜下观察VEGFR-2、CD133阳性表达,表明分离培养的细胞为EPCs。见图1。

图1 EPCs VEGFR-2和CD133阳性表达(免疫荧光染色,×100)

2.2 丹参通络解毒汤和内皮祖细胞对模型大鼠心功能的影响

与假手术组比较,模型组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显降低(P<0.01);与模型组比较,EPCs组、中药组、联合组及阻断剂组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显升高(P<0.01,P<0.05);与EPCs组比较,中药组、联合组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显升高(P<0.05,P<0.01),阻断剂组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显降低(P<0.01);与中药组比较,联合组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显升高(P<0.01),阻断剂组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显降低(P<0.01);与联合组比较,阻断剂组大鼠LVDP、LVSP和LVEF明显降低(P<0.01)。见表1。

表1 各组大鼠LVDP、LVSP和LVEF比较(±s)

表1 各组大鼠LVDP、LVSP和LVEF比较(±s)

注:1 mm Hg=0.133 kPa;与假手术组比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与EPCs组比较,△P<0.05,△△P<0.01;与中药组比较,▲▲P<0.01;与联合组比较,★★P<0.01

组别 只数 LVDP/mm Hg LVSP/mm Hg LVEF/%假手术组 10 80.03±3.54 125.50±3.31 85.75±2.21模型组 10 50.50±3.57** 92.30±3.43** 41.49±3.47**EPCs组 10 62.61±3.59## 105.94±4.45## 65.86±2.97##中药组 10 65.90±2.96##△ 109.96±4.40##△ 68.75±2.49##△联合组 10 72.67±3.79##△△▲▲ 115.90±2.74##△△▲▲ 75.56±3.46##△△▲▲阻断剂组 10 53.68±3.53#△△▲▲★★ 96.03±2.78#△△▲▲★★ 44.58±2.44#△△▲▲★★

2.3 丹参通络解毒汤和内皮祖细胞对模型大鼠心肌组织形态的影响

假手术组大鼠心肌纤维排列较整齐,无明显炎性细胞浸润;模型组大鼠心肌纤维排列紊乱、肿胀,心肌组织间质有大量炎性细胞浸润,且可见部分心肌细胞坏死;EPCs组大鼠心肌纤维排列较模型组整齐,心肌细胞坏死程度减轻;中药组大鼠心肌纤维排列较EPCs组整齐,可见少量炎性细胞浸润;联合组大鼠心肌纤维排列较整齐,炎性细胞浸润较EPCs组及中药组有所改善;阻断剂组大鼠心肌纤维排列紊乱,心肌纤维肿胀及炎性细胞浸润较明显,并可见部分心肌细胞变性及坏死。见图2。

图2 各组大鼠心肌组织形态(HE染色,×400)

2.4 丹参通络解毒汤和内皮祖细胞对模型大鼠心肌组织p-PI3K、p-Akt蛋白表达的影响

与假手术组比较,模型组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显升高(P<0.01);与模型组比较,EPCs组、中药组、联合组及阻断剂组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显升高(P<0.01,P<0.05);与EPCs组比较,中药组及联合组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显升高(P<0.05,P<0.01),阻断剂组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显降低(P<0.01);与中药组比较,联合组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显升高(P<0.01),阻断剂组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显降低(P<0.01);与联合组比较,阻断剂组大鼠心肌组织p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显降低(P<0.01)。见表2、图3。

表2 各组大鼠p-PI3K、p-Akt蛋白表达比较(±s)

表2 各组大鼠p-PI3K、p-Akt蛋白表达比较(±s)

注:与假手术组相比较,**P<0.01;与模型组比较,#P<0.05,##P<0.01;与EPCs组比较,△P<0.05,△△P<0.01;与中药组比较,▲▲P<0.01;与联合组比较,★★P<0.01

组别 只数 p-PI3K/GAPDH p-Akt/GAPDH假手术组 10 0.66±0.04 0.04±0.02模型组 10 0.89±0.04** 0.09±0.02**EPCs组 10 1.01±0.02## 0.17±0.02##中药组 10 1.05±0.03##△ 0.20±0.02##△联合组 10 1.20±0.03##△△▲▲ 0.25±0.03##△△▲▲阻断剂组 10 0.92±0.04#△△▲▲★★ 0.12±0.03#△△▲▲★★

图3 各组大鼠p-PI3K、p-Akt蛋白免疫印迹图

3 讨论

目前临床对AMI多采用介入、抗凝治疗,但无法调节梗死后心肌的再生和修复能力,因此效果并不理想。EPCs是骨髓和外周血的干细胞,具有较强的促血管生成和修复血管内皮功能[11]。中药可通过调控EPCs促进心血管疾病恢复。研究发现,黄芪甲苷能改善体外培养的人EPCs生物学功能,具有调节EPCs介导的血管新生潜能[12],黄芪多糖可通过上调血管内皮生长因子(VEGF)及相关受体的表达保护EPCs[13]。本研究发现,EPCs组较模型组心肌纤维排列整齐,心肌细胞坏死程度减轻,LVDP、LVSP、LVEF明显升高(P<0.01),提示EPCs移植可改善MIRI病理形态,提高心功能,保护心肌组织。EPCs联合丹参通络解毒汤灌胃治疗后,大鼠心肌纤维较单用EPCs或丹参通络解毒汤排列整齐,心功能明显改善,差异有统计学意义(P<0.01),表明丹参通络解毒汤能促进EPCs改善MIRI病理形态及心功能,保护心肌组织。

PI3K/Akt信号通路是再灌注损伤补救激酶信号通路之一,在MIRI中有重要作用。PI3K可被细胞外信号通路受体激活,活化的PI3K以磷酸化形式存在,可进一步激活二磷酸磷脂酰肌醇(PIP2)和三磷酸磷脂酰肌醇(PIP3),PIP3可将细胞外信号传导至下游Akt,p-Akt具有保护MIRI的作用[14]。马阳等[15]研究表明,Id-1和E2-2协同对PI3K/Akt信号通路起调控作用,进而影响EPCs的增殖。吴海卫等[16]研究发现,促红细胞生成素能降低EPCs凋亡率,其作用依赖PI3K/Akt信号通路。本研究结果显示,EPCs联合丹参通络解毒汤灌胃治疗后,大鼠心肌组织p-PI3K、p-Akt蛋白表达较单用EPCs或丹参通络解毒汤明显升高(P<0.01),采用PI3K阻断剂后,p-PI3K和p-Akt蛋白表达明显降低(P<0.01),提示丹参通络解毒汤可促进EPCs保护心肌组织,可能与调节PI3K/Akt信号通路有关。

MIRI可归属中医学“胸痹”“心悸”等范畴。火、毒、瘀在胸痹发病中有重要作用,火热积聚成毒,损伤心营,灼伤血脉,日久成瘀,导致“火”“毒”“瘀”积聚于心脉,引发胸痹[17]。MIRI从血瘀向毒证转化时,增加了急性心血管事件的发生,治疗当用活血解毒法[18]。丹参通络解毒汤由丹参、玄参、当归、黄连、栀子、黄芪组成,具有活血通络、清营解毒、益气养阴功效。本实验虽未完全阐明丹参通络解毒汤促进EPCs保护MIRI的作用机制,但结果提示,该方干预EPCs保护MIRI具有优势互补、协同增效的特点,推测该方还可能在EPCs动员、归巢、增殖和分化中起多靶点、多效应的调节作用,有待今后进一步研究。

综上,丹参通络解毒汤联合EPCs移植可显著保护MIRI,其机制可能与调控PI3K/Akt信号通路有关。本研究结果可为中医药干预干细胞移植、防治AMI提供实验依据。

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