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苹果液泡膜葡萄糖转运蛋白基因MdVGT1的克隆与表达分析

时间:2024-05-23

许海峰,刘静轩,王意程,左卫芳,曲常志,王得云,张 静,姜生辉,王 楠,陈学森



苹果液泡膜葡萄糖转运蛋白基因的克隆与表达分析

许海峰,刘静轩,王意程,左卫芳,曲常志,王得云,张 静,姜生辉,王 楠,陈学森

(山东农业大学园艺科学与工程学院/作物生物学国家重点实验室,山东泰安 271018)

【目的】研究新疆红肉苹果杂种一代优系‘红脆1号’液泡膜葡萄糖转运蛋白基因生物学信息、表达水平及其在糖代谢中的功能,旨在为进一步完善功能型苹果育种的理论与技术体系提供参考。【方法】以新疆红肉苹果杂种一代优系‘红脆1号’为试材,克隆,对其进行生物信息学分析;并采用荧光定量PCR分析该基因在不同组织及不同发育时期的表达,分析‘嘎啦’组培苗中该基因在葡萄糖诱导下的表达,通过酵母双杂交验证其互作关系,并通过原核诱导获得重组蛋白。【结果】在‘红脆1号’中克隆获得全长,测序发现其包含1 506 bp完整的开放阅读框,编码501个氨基酸,预测其编码蛋白质分子量为53.16 kD,等电点为5.92,定位于苹果基因组的1号染色体上,由14个外显子和13个内含子构成;糖代谢相关基因系统进化树分析表明,与、、在同一个进化枝上,功能域分析表明,MdVGT1蛋白含有12个跨膜区域;在苹果的花、叶和幼果中均有较高的表达,在果实发育中,其表达量与葡萄糖含量有显著的相关性;启动子含有与抗逆、糖信号及激素信号相关的顺式作用元件;葡萄糖处理‘嘎啦’组培苗一周后,的表达量明显提高;酵母双杂交试验表明,MdVGT1与MdTMT1在体外能相互作用,并通过原核诱导获得了MdVGT1的重组蛋白。【结论】在‘红脆1号’苹果中克隆获得了液泡膜葡萄糖转运蛋白基因,其可能与MdTMT1互作共同转运葡萄糖进入液泡膜。

苹果;液泡膜葡萄糖转运蛋白;;基因克隆;酵母双杂交;原核表达

0 引言

【研究意义】新疆野苹果及其红肉变型(f.(Dieck)Langenf.)是世界栽培苹果的祖先种,遗传多样性极为丰富,是苹果品质育种的重要种质[1],但新疆野苹果资源正遭到严重破坏,濒临灭绝,挖掘利用不够;生产上的栽培品种单一化态势明显,遗传基础变窄,而市场和消费者需要特色、多样化品种[2]。因此,进一步以新疆野苹果及其红肉变型为亲本创建的杂种分离群体为材料,研究MdVGT1蛋白在果实糖代谢中的作用,完善果实糖品质性状遗传与发育机理,对新疆野苹果资源的科学保护与持续高效利用具有重要意义。【前人研究进展】植物糖的运输主要由糖转运蛋白介导,目前在拟南芥中鉴定的至少有69种糖转运蛋白,分属8个亚家族,其中包括单糖转运蛋白家族[3]。多种糖的运输由单糖转运蛋白介导,如果糖、葡萄糖、麦芽糖及各种糖醇等,已报道的所有单糖转运蛋白都属于协助扩散超家族(MFS),也称为共转运蛋白家族。根据其运输方式或运输物质不同,包括液泡膜葡萄糖转运蛋白、液泡膜单糖转运蛋白和己糖转运蛋白等[4],第一个被鉴定的单糖转运蛋白是绿藻CkHUP1,其对葡萄糖有一定的特异性[5]。果实中的糖虽依靠叶片光合作用产物的输入,但其糖分积累主要还是果实内部的作用[6],积累场所主要在液泡中,且受液泡膜上糖转运蛋白的严格调控[7-8]。目前在拟南芥中己经鉴定的液泡膜糖转运蛋白主要有液泡膜葡萄糖转运蛋白(VGT)[9-10]和液泡单糖转运蛋白(TMT)[8],它们都定位于液泡膜。在苹果中,基因家族也得到鉴定,其中,和可能参与了果实成熟期蔗糖和果糖的积累[11]。【本研究切入点】课题组围绕新疆野苹果资源的保护与利用,在群体遗传结构等相关研究的基础上,于2006年率先构建了新疆红肉苹果与栽培苹果品种的杂种分离群体[12-13]。陈学森等[14]探讨了杂种一代类黄酮含量等性状遗传变异特点,并提出“功能型苹果”概念。张芮[15]和许海峰[16]等进行了杂种一代不同株系果实质地和类黄酮含量比较及相关基因表达分析,但杂种一代株系糖代谢机理及液泡膜葡萄糖转运蛋白VGTs有待进一步深入研究。【拟解决的关键问题】本研究以新疆红肉苹果杂种一代优系‘红脆1号’不同发育时期的果实及‘嘎啦’组培苗为试材,对苹果液泡膜葡萄糖转运蛋白MdVGT1进行生物信息及表达水平的分析,并通过酵母双杂交验证其互作关系及原核诱导获得重组蛋白,旨在为进一步研究苹果液泡膜葡萄糖转运蛋白的功能奠定基础,并为完善功能型苹果育种的理论与技术体系提供参考。

1 材料与方法

1.1 植物材料与处理

植物材料为从新疆红肉苹果(f.)中的‘塔尔阿尔玛’与‘烟富3号’(cv. Fuji)杂种一代选育出的‘红脆1号’优株以及‘嘎啦’组培苗(MS+0.5 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1IAA)。从2015年4月开始,分别采集‘红脆1号’花后30、60、90及120 d等不同发育时期的果实,取样后液氮速冻,-80℃保存备用;另取‘红脆1号’初花时的花及花后30 d的幼果、新生叶、生长根、幼茎,液氮速冻,-80℃保存备用;用葡萄糖(0、10和20 g·L-1)处理‘嘎啦’组培苗一周后,将苗液氮速冻,-80℃保存备用。

1.2 总RNA的提取与荧光定量

植物RNA提取试剂盒(DP432)、反转录试剂盒(KR106)、SYBR染料(FP205)均购自北京天根公司。荧光定量PCR仪型号为伯乐CFX96,按照SYBR® Green PCR Master Mix 说明书配制荧光定量PCR反应体系,每个样品设3个重复。反应体系为20 μL:10 μL 2.5×Real Master Mix/20×SYBR Solution,1 μL cDNA(50 ng·μL-1),上下游引物各1 μL(5 μmol·L-1),7 μL ddH2O。反应条件:①95.0℃预变性30 s;②95.0℃变性5 s;③58℃退火10 s;④72.0℃延伸30 s(②—④共45个循环);⑤ 65℃孵育20 s;⑥溶解温度从55℃到 95℃每升高0.5℃保持1 s;⑦停止反应。以苹果为内参,每个基因扩增均伴有内参同时扩增,默认条件下读取Ct值,采用2-ΔΔCT方法进行数据分析[17]。

1.3的克隆,生物信息分析与进化树的构建

利用拟南芥AtVGT1蛋白序列在苹果基因组中Blast比对得到一个基因序列号为MDP0000863082的基因,暂命名为,设计一对引物5′-ATG GCGTCGGATCCTGAG-3′和5′-CTAAAGGCACTT GGCCTCAAT-3′,以‘红脆1号’cDNA为模板,按照phusion高保真DNA扩增酶(F530)说明书进行PCR,用1%的琼脂糖凝胶对PCR产物进行电泳并回收目的条带,连接PLB零背景载体(VT205)进行测序。

利用Expasy网站(http://web.expasy.org/protparam/)对氨基酸的理化性质进行分析,利用SMART网站(http://smart.embl-heidelberg.de/smart/set_mode.cgi?GENOMIC=1)对蛋白结构功能域进行分析,利用MEGA 5软件构建进化树。

1.4 果肉葡萄糖含量的测定

参照赵智中等[18]的方法略做改进,准确称取5 g果肉,研磨成匀浆后转入到30 mL离心管中,加入25 mL超纯水,80℃水浴超声提取1 h,使可溶性糖和有机酸充分浸出,冷却后10 000 r/min离心15 min,将上清液过滤到50 mL的容量瓶中,残渣加入15 mL超纯水再提取,合并上清液,超纯水定容。用0.22 μm滤膜过滤后,液相色谱根据葡萄糖标准曲线和样品峰面积计算葡萄糖含量。色谱条件:岛津RID-10A示差折光检测器,色谱柱YMC Polyamine II(长度×内径:250 mm×4.6 mm,颗粒径:5 μm),流动相:乙腈﹕水=75﹕25(V﹕V),灵敏度:4,进样量:10 μL,流速:0.8 mL·min-1,柱温:30℃。

1.5 酵母双杂交

用引物5′-CATATGATGGCGTCGGATCCTGAG- 3′和5′-GAATTCCTAAAGGCACTTGGCCTCAAT-3′扩增的编码框序列,用引物5′-CATATGAT GAAGAAGGGAGCCGTG-3′和5′-GTCGACTTACTCGTTTTTGGCAGCC-3′扩增的编码框序列,之后连接PLB零背景载体。用Ⅰ和RⅠ对MdVGT1-PLB和pGADT7分别进行双酶切,用Ⅰ和Ⅰ对MdTMT1-PLB和pGBKT7分别进行双酶切,构建pGADT7-和pGBKT7-重组载体。按照YeastmakerTMYeast Transformation System 2试剂盒(Clontech)说明书方法,将这两种重组质粒共转化到酵母Y2H感受态细胞,细胞先培养在-T-L选择性培养基中(-Leu/Trp,Clontech),然后将生长的细胞培养在-T-L-H-A选择性培养基中(-Ade/-His/-Leu/-Trp,Clontech),最后用X-α-gal作为底物添加到四缺培养基中检测β-galactosidase。

1.6原核表达

用引物5′-GAATTCATGGCGTCGGATCCTGAG- 3′和5′-GTCGACCTAAAGGCACTTGGCCTCAAT-3′扩增的编码框序列,之后连接到PLB零背景载体。用RⅠ和Ⅰ对克隆载体和原核表达载体pET28a分别进行双酶切,构建原核重组表达载体pET28a-,将重组质粒转化到大肠杆菌DE3感受态中。加入1 mmol·L-1IPTG后分别在0、2、4、6 h时取样于4℃暂时保存,取6 h菌液离心收集菌体,用8 mL PBS缓冲液悬浮,超声破碎(打6 s,停9 s,25个循环)分离可溶性蛋白和包涵体,SDS-PAGE电泳检测。

1.7 数据分析

用Excel 2007进行作图和数据分析,DPS 7.05软件进行显著性分析,spss进行相关性分析。

2 结果

2.1的克隆与基因组结构分析

如图1所示,获得了一条大小约为1 500 bp的条带,与预期大小一致,序列测定与分析表明,的完整开放阅读框长度为1 506 bp,编码501个氨基酸,预测其蛋白质分子量为53.16 kD,等电点为5.92。

图1 MdVGT1编码区全长的RT-PCR扩增

利用GDR数据库(http://www.rosaceae.org/)分析的染色体位置和基因结构。如图2所示,位于苹果基因组的1号染色体上,由14个外显子和13个内含子构成。

2.2 MdVGT1的进化树和结构功能域

如图3所示,液泡单糖转运蛋白TMT和蔗糖转运蛋白SUT/SUC分别在不同物种间都在同一个进化树枝上,因其具有相同的功能。而MdVGT1和拟南芥AtVGT1同样在同一个进化树枝上,推测苹果与拟南芥的功能相似(图3中比例尺0.1代表每10个氨基酸有1个不同)。SMART功能域分析表明MdVGT1有12个跨膜区域。

图2 MdVGT1染色体定位和基因组结构

图3 糖代谢相关转运蛋白系统进化树分析

2.3组织表达特性及果实发育过程中表达量与葡萄糖含量相关性

由图4可得,在根、茎、叶、花、果实中都有表达,其中在叶、花和果实中具有较高的表达。由图5可得,表达量和葡萄糖含量均在花后120 d达到最大值,经Spss显著性分析可得,表达量和葡萄糖含量在0.05水平上显著相关(显著性系数为0.986)。

2.4启动子顺式作用元件和葡萄糖处理‘嘎啦’组培苗的表达

利用https://sogo.dna.affrc.go.jp/cgi-bin/sogo.cgi?sid=&lang=en&pj=640&action=page&page=newplace网址分析启动子的顺式作用元件,结果如表1。启动子序列含有多个与抗逆性相关的作用元件:ACGTATERD1和MYBCORE是与脱水相关的元件[19-21],MYB1LEPR是与防御相关的元件[22],MYCCONSENSUSAT是与低温相关的元件[23-24];SREATMSD是与糖信号相关的元件[25]。此外,在启动子序列中还发现了不同激素响应元件:细胞分裂素诱导顺式作用元件CPBCSPOR[26],脱落酸相关作用元件ABRELATERD1[27],乙烯代谢相关作用元件ERELEE4[28-29]。表明除受糖信号诱导外,还可能参与了抗逆和逆境胁迫反应。

图4 MdVGT1在不同苹果组织中的相对表达量

图5 ‘红脆1号’苹果果实不同发育期VGT1相对表达量和葡萄糖含量

图6中,CK表示‘嘎啦’组培苗生长在不添加葡萄糖的培养基,处理1表示‘嘎啦’组培苗生长在10 g·L-1培养基(MS+0.5 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1IAA+ 10 g·L-1葡萄糖),处理3表示‘嘎啦’组培苗生长在20 g·L-1培养基(MS+0.5 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1IAA+ 20 g·L-1葡萄糖)。由图6可得,培养基中葡萄糖含量越高,的表达量也越高。

图6 MdVGT1基因在葡萄糖诱导下的相对表达量

表1 MdVGT1基因上游调控序列重要顺式作用元件分析

2.5 MdVGT1与MdTMT1酵母双杂交

由图7酵母双杂交试验可得,空载体pGADT7和MdTMT1+pGBKT7、空载pGBKT7和MdVGT1+pGADT7共转Y2H均在二缺板上生长,在四缺及四缺+X-α-gal不生长;而MdVGT1和MdTMT1共转Y2H在二缺、四缺及四缺+X-α-gal都能生长,因此推测其在体外能够相互作用。

2.6 MdVGT1蛋白的原核表达

由图8可得,1 mmol·L-1IPTG诱导0、2、4、6 h后的蛋白提取物经SDS-PAGE电泳在55 kD左右有一条带,与预期蛋白大小一致,且颜色随时间推移变深。此外,经超声破碎后,诱导产生的MdVGT1蛋白以包涵体的形式存在。

图7 MdVGT1和MdTMT1酵母双杂交

图8 pET28a-VGT1在大肠杆菌BL21中的表达产物、上清液和包涵体蛋白的SDS-PAGE

3 讨论

3.1 液泡膜葡萄糖转运蛋白MdVGT1与糖代谢关系

植物中糖转运蛋白都有相似的拓扑结构,为膜结合蛋白,有12个跨膜结构域,不仅可以跨细胞膜,有的还跨液泡膜和质体膜或者线粒体膜[30]。拟南芥和主要在花和叶中表达[8-9],其中对葡萄糖有着高度特异性,而不仅能转运葡萄糖,对果糖也有一定的选择性,同时也可作为蔗糖的逆向转运蛋白,转运蔗糖进入液泡[10,31]。另有研究表明拟南芥和苹果能够参与ABA诱导的糖代谢途径[32-33],而可受低温,盐胁迫等诱导参与逆境胁迫与糖信号代谢[8]。本研究发现,MdVGT1蛋白的结构和功能与拟南芥糖转运蛋白类似,分析其启动子发现,它可能参与激素和逆境胁迫相关的糖代谢途径,其表达水平对葡萄糖含量有一定的特异性,且可能与MdTMT1在液泡膜形成复合体共同转运葡萄糖进入液泡。同时通过原核诱导获得了MdVGT1的重组蛋白,上述工作为进一步研究MdVGT1蛋白的功能奠定了基础。

3.2 糖代谢与功能型苹果育种

有效利用现代分子生物学技术,及时借鉴模式植物的最新研究进展与成果,积极探讨果树特色种质或新品种在品质性状形成与调控机理方面的特异性,是近几年果树分子生物学研究领域的重要趋势之一[15]。因此,新疆野苹果资源的亲本利用,不仅可培育功能型苹果等特色多样化品种(系),实现资源的利用保存,创建多层次的种质资源保护保存技术体系,同时为果实糖品质性状遗传与发育机理的研究提供了丰富的试验材料[2]。本文以新疆红肉苹果杂种一代‘红脆1号’为试材,克隆了液泡膜葡萄糖转运蛋白MdVGT1,初步探讨了其与葡萄糖及MdTMT1的关系,未来将对新疆红肉苹果杂种分离群体糖含量差异的优株进行糖代谢相关基因的表达分析及糖转运蛋白的研究,旨在从新疆红肉苹果杂种一代中选育出含糖量多的功能型苹果品种。

4 结论

在‘红脆1号’苹果中克隆获得了液泡膜葡萄糖转运蛋白基因,其表达量与葡萄糖含量显著相关且受葡萄糖诱导;其可能与MdTMT1互作共同转运葡萄糖进入液泡膜。原核诱导获得了其重组蛋白,可用于进一步研究MdVGT1蛋白在果实糖代谢中的转运机制。

References

[1] NOCKER S V, BERRY G, NAJDOWSKI J, MICHELUTTI R, LUFFMAN M, FORSLINE P, ALSMAIRAT N, BEAUDRY R, MURALEEDHARAN G N, ORDIDGE M. Genetic diversity of red-fleshed apples ()., 2012, 185: 281-293.

[2] 王立霞, 冀晓昊, 安萌萌, 张宗营, 王艳廷, 王传增, 吴玉森, 吴树敬, 陈学森. 几个功能型苹果优株果实风味品质的评价. 果树学报, 2014, 31(5): 753-759.

WANG L X, JI X H, AN M M, ZHANG Z Y, WANG Y T, WANG C Z, WU Y S, WU S J, CHEN X S. Evaluation on apple fruit flavor quality of several functional superior apple strains., 2014, 31(5): 753-759. (in Chinese)

[3] RAE A, PERROUX J M, GROF C P L. Sucrose partitioning between vascular bundles and storage parenchyma in the sugarcane stem: apotential role for the ShSUT1 sucrose transporter., 2005, 220(6): 817-825.

[4] MICHAEL B. The monosaccharide transporter(-like) gene family in., 2007, 33(12): 2318-2324.

[5] WILL A, TANNER W. Importance of the first external loop for substrate recognition as revealed by chimeric Chlorella monosaccharide/ H symporters., 1996, 381: 127-130.

[6] RUAN Y L, PATRICK J W. The cellular pathway of post-phloem sugar transport in developing tomato fruit., 1995, 196: 434-444.

[7] YAMAKI S, INO M. Alteration of cellular compartmentation and membrane permeability to sugars in immature and mature apple fruit., 1992, 117: 951-954.

[8] WORMIT A, TRENTMANN O, FEIFER I, LONR C, TJADEN J, MEYER S, SCHMIDT U, MARTINOIA E, NEUHAUS H E. Molecular identification and physiological characterization of a novel monosaccharide transporter frominvolved in vacuolar sugar transport., 2006, 18(12): 3476-3490.

[9] SIRISHA ALURI, MICHAEL BUTTNER. Identification and functional expression of the Arabidopsis thaliana vacuolar glucose transporter 1 and its role in seed germination and flowering., 2006, 104: 2537-2542.

[10] WINGENTER K, SCHULZ A, WORMIT A, WIC S, TRENTMANN O, HOERMILLER I I, HEYER A G, MARTEN I, HEDRICH R, NEUHAUS H E. Increased activity of the vacuolar monosaccharide transporter TMT1 alters cellular sugar partitioning, sugar signaling,and seed yield in., 2010, 154(2): 665-677.

[11] 马新立, 秦源, 魏晓钰, 马锋旺, 李明军. 苹果糖转运蛋白TMT基因的表达及其与糖积累的关系. 园艺学报, 2014, 41(7): 1317-1325.

MA X L, QIN Y, WEI X Y, MA F W, LI M J. Sequence and expression analysis of apple tonoplast monosaccharide transporter TMT genes and their relationship with sugar accumulation in fruit., 2014, 41(7): 1317-1325. (in Chinese)

[12] CHEN X S, FENG T, ZHANG Y M, HE T M, FENG J R, ZHANG C Y. Genetic diversity of volatile components in Xinjiang wild apple ()., 2007, 34(2): 171-179.

[13] ZHANG C Y, CHEN X S, HE T M, LIU X L, FENG T, YUAN Z H. Genetic structure ofpopulation from Xinjiang, China, revealed by SSR markers., 2007, 34(10): 947-955.

[14] 陈学森, 张晶, 刘大亮, 冀晓昊, 张宗营, 张芮, 毛志泉, 张艳敏, 王立霞, 李敏. 新疆红肉苹果杂种一代的遗传变异及功能型苹果优株评价. 中国农业科学, 2014, 47(11): 2193-2204.

CHEN X S, ZHANG J, LIU D L, JI X H, ZHANG Z Y, ZHANG R, MAO Z Q, ZHANG Y M, WANG L X, LI M.Genetic Variation of F1 population betweenand apple varieties and evaluation on fruit characters of functional apple excellent strains., 2014, 47(11): 2193-2204. (in Chinese)

[15] 张芮, 张宗营, 高利平, 冀晓昊, 毛志泉, 许海峰, 王楠, 吴树敬, 陈学森. 苹果绵肉与脆肉株系果实质地差异的分子机理. 中国农业科学, 2015, 48(18): 3676-3688.

ZHANG R, ZHANG Z Y, GAO L P, JI X H, MAO Z Q, XU H F, WANG N, WU S J, CHEN X S. Study on the molecular mechanism controlling differences in fruit texture formation of apple soft/crisp strains., 2015, 48(18): 3676-3688. (in Chinese)

[16] 许海峰, 王楠, 姜生辉, 王意程, 刘静轩, 曲常志, 王得云, 左卫芳, 张晶, 冀晓昊, 张宗营, 毛志泉, 陈学森.新疆红肉苹果杂种一代4个株系类黄酮含量比较及其合成相关基因表达分析. 中国农业科学, 2016, 49(16): 3174-3187.

XU H F, WANG N, JIANG S H, WANG Y C, LIU J X, QU C Z, WANG D Y, ZUO W F, ZHANG J, JI X H, ZHANG Z Y, MAO Z Q, CHEN X S.Comparison of content and analysis of biosynthesis- related genes in flavonoid among four strains ofF1 population., 2016, 49(16): 3174-3187. (in Chinese)

[17] KENNETH J L, THOMAS D S. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-△△CTmethod., 2001, 25: 402-408.

[18] 赵智中, 张上隆, 徐昌杰, 陈昆松, 刘拴桃. 蔗糖代谢相关酶在温州蜜柑果实糖积累中的作用. 园艺学报, 2001, 28(2): 112-118.

ZHAO Z Z, ZHANG S L, XU C J, CHEN K S, LIU S T. Roles of activities of sucrose-metabolizing en-zymes in accumulation of sugars in satsuma mandarin fruit., 2001, 28(2): 112-118. (in Chinese)

[19] SIMPSON S D, NAKASHIMA K, NARUSAKA Y, SEKI M, SHINOZAKI K, YAMAGUCHI-SHINOZAKI K. Two different novel cis-acting elements of erd1, a clpA homologous Arabidopsis gene function in induction by dehydration stress and dark-induced senescence., 2003, 33(2): 259-270.

[20] URAO T, YAMAGUCHI-SHINOZAKI K, URAO S, SHINOZAKI K. Anmyb homolog is induced by dehydration stress and its gene product binds to the conserved MYB recognition sequence., 1993, 5(11): 1529-1539.

[21] SOLANO R, NIETO C, AVILA J, CANAS L, DIAZ I, PAZ-ARES J. Dual DNA binding specificity of a petal epidermis-specific MYB transcription factor(MYB.Ph3)from., 1995, 14(8): 1773-1784.

[22] CHAKRAVARTHY S, TUORI R P, DASCENZO M D, FOBERT P R, DESPRES C, MARTIN G B. The tomato transcription factor Pti4 regulates defence-related gene expression via GCC box and non-GCC box cis elements., 2003, 15(12): 3033-3050.

[23] ABE H, URAO T, ITO T, SEKI M, SHINOZAKI K, YAMAGUCHI- SHINOZAKI K.AtMYC2 (bHLH) and AtMYB2 (MYB) function as transcriptional activators in abscisic acid signaling., 2003, 15(1): 63-78.

[24] AGARWAL M, HAO Y, KAPOOR A, DONG C H, FUJII H, ZHENG X, ZHU J K. A R2R3 type MYB transcription factor is involved in the cold regulation of CBF genes and in acquired freezing tolerance., 2006, 281(49): 37636-37645.

[25] TATEMATSU K, WARD S, LEYSER O, KAMIYA Y, NAMBARA E. Identification of cis-elements that regulate gene expression during initiation of axillary bud outgrowth in., 2005, 138(2): 757-766.

[26] FUSADA N, MASUDA T, KURODA H, SHIMADA H, OHTA H, TAKAMIYA K. Identification of a novel cis-element exhibiting cytokinin-dependent protein binding in vitro in the 5′-region of NADPH-protochlorophyllide oxidoreductase gene in cucumber., 2005, 59(4): 631-645.

[27] NAKASHIMA K, FUJITA Y, KATSURA K, MARUYAMA K, NARUSAKA Y, SEKI M. Transcriptional regulation of ABI3- and ABA-responsive genes including RD29B and RD29A in seeds, germinating embryos, and seedlings of., 2006, 60: 51-68.

[28] MONTGOMERY J, GOLDMAN S, DEIKMAN J, MARGOSSIAN L, FISCHER R L.dentification of an ethylene-responsive region in the promoter of a fruit ripening gene., 1993, 90: 5939-5943.

[29] RAWAT R, XU Z F, YAO K M, CHYE M L. Identification of cis-elements for ethylene and circadian regulation of the Solanum melongena gene encoding cysteine proteinase., 2005, 57: 629-643.

[30] 袁进成, 刘颖慧. 植物糖转运蛋白研究进展. 中国农学通报, 2013, 29(36): 287-294.

YUAN J C, LIU Y H. Genetics and functional properties of sugar transporters in plants., 2013, 29(36): 287-294. (in Chinese)

[31] SCHULZ A, BEYHL D, MARTEN I, WORMIT A, NEUHAUS E, POSCHET G, BÜTTNER M, SCHNEIDER S, SAUER N, HEDRICH R. Proton-driven sucrose symport and antiport is provided by the vacuolar transporters SUC4 and TMT1/2., 2011, 68: 129-136.

[32] STEFAN H, MATTHIAS N, ANDREA F, JULIA H, NORBERT S. An ABA-responsive element in the AtSUC1 promoter is involved in the regulation of AtSUC1 expression., 2010, 232: 911-923.

[33] PENG C C, XUY H, XI R C, ZHAO X L.Expression, subcellular localization and phytohormone stimulation of a functional sucrose transporter (MdSUT1) in apple fruit., 2011, 128(3): 206-212.

(责任编辑 赵伶俐)

Isolation and Expression Analysis of a Vacuolar Glucose Transporter Gene

XU Hai-feng, LIU Jing-xuan, WANG Yi-cheng, ZUO Wei-fang, QU Chang-zhi, WANG De-yun, ZHANG Jing, JIANG Sheng-hui, WANG Nan, CHEN Xue-sen

(College of horticulture science and engineering, Shandong Agricultural University/State Key Laboratory of Crop Biology, Tai’an 271018, Shandong)

【Objective】In order to develop the theory and breeding technology of functional apple, the bioinformatics, the expression level and the function in the sugar metabolism several aspects of vacuolar glucose transporter genef.F1population were studied. 【Method】Thethe bioinformation of it was analyzed. The expression level ofexpression ofinduced by glucose in tissue culture seedlings of ‘gala’ was also analyzed. Meanwhile, the interaction betweenandwas verifiedby yeast two-hybrid system and the recombinant protein by the prokaryotic induction technology was obtained. 【Result】 The full length of,and pI was 5.92. Furthermore, it was inferred that the gene includes 14 exons and 13 introns, and is located on the chromosome 1 of the apple genome. A phylogenetic tree indicated that,,andare located in the same evolutionary branch. Analysis of functional domain showed that MdVGT1 contains 12 transmembrane regions.has the higher expression level in flowers, leaves and young fruits of apples, and its expression has a significant correlation with the content of glucose during the development stage of fruits. The promoter ofcontains several typical cis-acting elements, including defense responsive elements, sugar signaling responsive elements and phytohormone responsive elements, and the expression of MdVGT1 in tissue culture seedlings of ‘gala’ was significantly increased after glucose treatment a week later. The yeast two hybrid experiments showed that the MdVGT1 could interact with MdTMT1 . In addition, the recombinant protein of MdVGT1was obtained by the prokaryotic induction technology. 【Conclusion】The vacuolar glucose transporter gene

apple; vacuolar glucose transporter;; gene clone; yeast two hybrid; prokaryotic expression

2016-04-26;接受日期:2016-07-14

国家自然科学基金(31572091)、国家公益性行业(农业)科研专项(201303093)

许海峰,E-mail:997524744@qq.com。通信作者陈学森,E-mail:chenxs@sdau.edu.cn

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