当前位置:首页 期刊杂志

微波辅助低共熔溶剂提取葡萄果渣中原花青素及其稳定性研究

时间:2024-05-23

付佳乐,耿 直,陈革豫

(陕西国际商贸学院医药学院,西安 712046)

葡萄作为传统的药食兼用植物,含有丰富的营养活性物质[1],如原花青素、蛋白质、多种微量元素、维生素等[2],其中原花青素含量最高,约占1/5。原花青素是一种多酚类化合物,广泛分布于黑枸杞、葡萄、银杏叶、玫瑰等草本植物中,是一种自然强抗氧化剂,能够提高人体的防御机能,有效保护人体细胞,清除自由基,同时能够改善皮肤,修复已经破损的细胞等功能[3-5]。葡萄果渣中富含花青素,但经常用作肥料或被丢弃,不但对环境造成污染,同时也浪费了资源[6]。

低共熔溶剂(DESs)在2003 年首次被提出,是一种离子溶液,由一定化学计量比例的氢键受体和氢键供体构成,具有溶解性强、制备简单、成本低、不易挥发、可进行生物降解等优点,极大程度地避免了对环境的污染,是近年来运用最广泛的绿色溶剂之一[7,8]。低共熔溶剂的物理性质可以通过配比加以调节,可以减小辅助配体和氢氧键供体含量的加入,通过对萃取温度的调节,以更大程度地增加提取含量。但低共熔溶剂目前仍处于待开发阶段,在原花青素的提取方面报道很少[9,10]。通过试验研究,以期为低共熔溶剂的开发提供一定的参考和借鉴,也为原花青素的保存提供依据。

1 材料与方法

1.1 试验仪器与材料

仪器与设备:UV1810 型紫外可见分光光度计,上海美普达仪器有限公司;PHS-25 型pH 计,上海伟业仪器厂;TGL-16B 型高速离心机,上海安亭科学仪器厂;KY-MCR-3 型微电脑微波化学反应器,上海秋佐科学仪器有限公司。

材料与试剂:原花青素标椎品(HC89537),上海惠诚生物科技有限公司;葡萄果渣,陕西省咸阳市博惠种植合作社;氯化胆碱(含量98%,V62201125),山东优索化工科技有限公司;乙醇、甲醇、丙三醇、草酸、柠檬酸、氯化镁、维生素C、过氧化氢等均为分析纯,水为纯化水。

1.2 试验方法

1.2.1 原料预处理 葡萄果渣烘干,粉碎,过40 目筛备用。

1.2.2 低共熔溶剂的制备 按照试验中处方比例,将不同的氢键供体同氯化胆碱进行化学计量融合,置锥形瓶中,80 ℃水浴加热40 min,静置,冷却至室温。

1.2.3 供试品溶液的制备

1)缓冲液的制备。将1.49%的KCl 溶液与1.7%的HCl 溶液按照体积比25∶67 混合,调节pH 至1.0±0.1[11]。

2)原花青素粗提液的制备。取“1.2.1”项下葡萄果渣细粉0.5 g 于锥形瓶中,加入低共熔溶剂,振摇后微波提取,提取液于3 800 r/min 离心10 min,上清液加缓冲溶液定容至25 mL,待用。

1.2.4 标准品溶液的配制 精密称定0.025 0 g 原花青素标准品至25 mL 容量瓶中,用适量甲醇溶解后定容至刻度,摇匀,即得1 mg/mL 的标准品溶液。

1.2.5 标准曲线的绘制 取6 支10 mL 试管,分别加入“1.2.4”项下标准品溶液0、1、2、3、4、5 mL,精密加入4%香草醛-甲醇溶液3 mL、浓盐酸1.5 mL,摇匀,30 ℃水浴反应30 min,500 nm 波长处测定吸光度[12]。以原花青素浓度C(mg/mL)为横坐标,吸光度A为纵坐标,绘制原花青素标准曲线图。

1.2.6 评价指标

原花青素提取率=提取液中原花青素浓度×提取液体积/葡萄果渣质量×(1-葡萄果渣水分含量)。

1.2.7 葡萄果渣中原花青素的提取

1)单因素试验。①低共熔溶剂类型。按照固定低共熔溶剂摩尔比(氯化胆碱∶氢键供体)1∶2、液固比30∶1、微波功率500 W、提取温度40 ℃、提取时间40 s 的参数进行提取试验[11-14]。以原花青素提取率为指标,确定低共熔溶剂种类。②低共熔溶剂摩尔比。在液固比30∶1、微波功率500 W、提取温度40 ℃、提取时间40 s 条件下,用氯化胆碱/丙三醇作提取剂,计算原花青素提取率,确定摩尔比。③微波功率。在液固比30∶1、提取温度40 ℃、提取时间40 s条件下,以摩尔比1∶3 的氯化胆碱/丙三醇作提取剂进行提取。计算原花青素提取率,确定微波功率。④液固比。在微波功率420 W、提取温度40 ℃、提取时间40 s 条件下,以摩尔比1∶3 的氯化胆碱/丙三醇作提取剂,考察不同的液固比对原花青素提取量的影响。计算原花青素提取率,确定液固比。⑤提取时间。原花青素提取率会随提取时间的延长而增加,但提取时间过长会导致原花青素降解,因此通过预试验结果确定微波提取时间为40 s。⑥提取温度。温度过高易导致原花青素发生降解,因此确定提取温度为40 ℃。

2)正交试验设计。在单因素试验结果基础上,设计正交试验,得到最佳工艺。

1.2.8 原花青素稳定性研究 以“1.2.7”项下试验最佳工艺葡萄果渣提取液为原料,以原花青素保留率为评价指标,分别连续间隔1 h 进行测定,考察在pH为1、2、3、4、5、6、7、8、9、10,温度为4、20、40、60、80 ℃,室内日光灯照下与室内避光,氧化剂(H2O2)浓度为0、0.5%、1.0%、2.0%、3.0%,还原剂(维生素C)浓度为0、0.04、0.08、0.16、0.32 g/L,K+、Na+、Ca2+、Mg2+、Zn2+等金属离子对原花青素保留率的影响[15,16]。

式中,A1为检测溶液原花青素吸光度;A2为初始样品溶液原花青素吸光度。

2 结果与分析

2.1 线性关系结果

由图1可知,标准曲线方程为A=1.049C+0.013 1,相关系数R2=0.999,原花青素浓度在0.10~0.50 mg/mL范围内呈线性关系。

图1 原花青素浓度-吸光度标准曲线

2.2 葡萄果渣中原花青素的提取工艺单因素试验结果

2.2.1 低共熔溶剂类型对原花青素提取率的影响由表1 可知,以氯化胆碱/丙三醇为溶剂组提取率最高,为18.86%,其次是氯化胆碱/丙二醇,为18.42%,氯化胆碱/草酸组为17.75%。即多元醇对原花青素的提取率较高,且随着醇羟基的增加提取率提高,有机酸组的提取率稍低,可能是由于醇羟基和有机酸对原花青素的氢键作用更强;糖供体的提取率最低,可能与糖的极性偏大有关。但可以看出多元醇和有机酸供体试验得到的提取率相差不大,因此,选择氯化胆碱/丙三醇、氯化胆碱/丙二醇、氯化胆碱/草酸作为提取溶剂,采用正交试验设计进一步研究。

表1 低共熔溶剂类型对原花青素提取率的影响结果

2.2.2 低共熔溶剂摩尔比对原花青素提取率的影响 由图2 可知,当摩尔比(氯化胆碱∶氢键供体)为1∶3 时,原花青素提取率最大,为19.19%;当摩尔比为1∶2 时,为18.73%;当摩尔比为1∶4 时,为18.67%。因此选择摩尔比为1∶2、1∶3、1∶4 作为摩尔比的考察因素水平。

图2 摩尔比对原花青素提取率的影响

2.2.3 微波功率对原花青素提取率的影响 由图3可知,当微波功率为420 W 时,提取率为19.26%;当微波功率为560 W 时,提取率为18.75%;当微波功率为280 W 时,提取率为18.58%。因此选择280、420、560 W 作为微波功率的考察水平。

图3 微波功率对原花青素提取率的影响

2.2.4 液固比对原花青素提取率的影响 由图4 可知,当液固比为40∶1 时,原花青素的提取率最大,为17.96%。因此选择30∶1、40∶1、50∶1 作为液固比的考察水平。

图4 液固比对原花青素提取率的影响

2.3 正交试验安排及结果

采用L9(34)正交试验,以原花青素的提取率为评价指标进行试验研究,正交试验因素水平与结果分析见表2、表3,方差分析见表4。

表2 葡萄果渣提取工艺因素与水平

表3 正交试验安排及结果

表4 正交试验结果方差分析

通过正交试验结果可以得出,葡萄果渣中原花青素的最佳提取工艺为A3B2C2D2,即在微波功率420 W、提取温度40 ℃、提取时间40 s、液固比40∶1的条件下,以摩尔比1∶2 的氯化胆碱/丙三醇作提取剂进行提取。通过直观分析可以看出因素的影响大小为C>B>A>D,即微波功率影响最大,液固比影响最小。

2.4 验证试验

对最佳提取工艺进行验证试验,由表5 可知,该工艺稳定可行,平均提取率达19.57%。

表5 验证试验结果

2.5 原花青素的稳定性研究

2.5.1 pH 对原花青素保留率的影响 pH 对原花青素保留率的影响见表6。通过试验结果可以看出,当pH≤2 时,5 h 后原花青素的保留率仍在85%以上,当pH≥3 时,5 h 后原花青素的保留率均低于70%,随着pH 的增大,原花青素稳定性逐渐降低。

表6 pH 对原花青素保留率的影响

2.5.2 温度对原花青素保留率的影响 由图5 可知,2 h后60 ℃以及80 ℃的保留率均低于80%,而5 h后只有4 ℃条件下保留率在80%以上,室温20 ℃条件下接近80%,由此可见,温度升高,原花青素快速降解,造成原花青素的损失。因此原花青素需在20 ℃以下保存,最佳温度为4 ℃左右。

图5 温度对原花青素保留率的影响

2.5.3 光照对原花青素保留率的影响 由图6 可知,随着光照时间的延长,日光灯下原花青素的保留率急剧下降,5 h 后保留率仅有60%,而避光下保留率仍在80%以上。由此可见,较强的光照会使原花青素发生降解。

图6 光照对原花青素保留率的影响

2.5.4 氧化剂(H2O2)对原花青素保留率的影响 由图7 可知,反应2 h 后,H2O2溶液组保留率均发生比较明显下降,为90%以下,5 h 后下降到60%以下;H2O2溶液浓度越高,保留率下降趋势越明显。可能原因是H2O2使原花青素开环生成查尔酮,进一步发生化学反应生成酯类物质。

图7 H2O2对原花青素保留率的影响

2.5.5 还原剂(维生素C)对原花青素保留率的影响 由图8 可知,当维生素C 浓度低于0.32 g/L 时,原花青素3 h 的保留率仍为80%以上,5 h 时也没有大幅度的下降,当浓度达0.32 g/L 时,3 h 后原花青素的保留率急剧下降,由此可见,随着时间的延长和维生素C 浓度的升高,原花青素的保留率会逐渐降低,但维生素C 浓度低于0.32 g/L 时,原花青素的保留率相对稳定,说明维生素C 也在一定程度上保护原花青素。

图8 维生素C 对原花青素保留率的影响

2.5.6 金属离子对原花青素保留率的影响 由图9可知,加入金属离子后,随着时间的延长,原花青素的保留率逐渐降低,其中Zn2+存在条件下,原花青素保留率下降较缓慢,5 h 后保留率仍然在80%左右,在K+、Na+、Ca2+、Mg2+存在条件下,原花青素保留率下降较明显,4 h 后,保留率均在80%以下,说明这些金属离子对原花青素的稳定性有一定的破坏作用。

图9 金属离子对原花青素保留率的影响

3 讨论

1)本试验选择低共熔溶剂,与传统的提取技术相比,可以使得原花青素的提取率提升近20%。一方面,低共熔溶剂简单易得,造价低廉,稳定性高,绿色环保,在今后的生活生产中还有极大的开发潜能;另一方面,试验所提取的原花青素不仅能够运用于食品的添加,在药用价值上也有着不可估量的前景。

2)稳定性试验中,发现当pH 为4 时会发生比较剧烈的变化,原花青素的保留率2 h 时已经降到70%以下,其机制仍需进一步研究。在对金属离子的研究过程中,Zn2+对其保留率的影响比较缓和,这可能与Zn2+分子量稍大,带有金属活性等有关,金属离子对原花青素的影响有待更全面和深入研究。

3)目前原花青素利用的发展前景非常广阔,如通过制备甲基壳聚糖微纳米粒子等多种创新技术,大大提高了植物原花青素的稳定性。但是这些研究方法由于高技术成本、低质量安全性等原因尚未完全得到广泛推广应用,相关的化学作用机理也不清楚,原花青素的营养质量和生物稳定性也有待进一步研究。

免责声明

我们致力于保护作者版权,注重分享,被刊用文章因无法核实真实出处,未能及时与作者取得联系,或有版权异议的,请联系管理员,我们会立即处理! 部分文章是来自各大过期杂志,内容仅供学习参考,不准确地方联系删除处理!