转基因大豆对建鲤抗氧化、生化及免疫指标的影响

俞涛涛,张家国,3,黄小霞,华茂圳,蒋乐霞,黄宝生,张长峰

( 1.上海海洋大学,农业农村部鱼类营养与环境生态研究中心,上海 201306; 2.山东商业职业技术学院,山东 济南 250103; 3.山东省农产品贮运保鲜技术重点实验室,山东 济南 250103; 4.广东海洋大学,广东 湛江 524000 )

鱼粉作为优质蛋白源是水产动物养殖过程中不可缺少的饲料原料[1],而其资源的匮乏与价格的持续增长给水产养殖业带来了严重的负面影响,寻求新的蛋白源以替代鱼粉成为当前的研究热点[2]。近年来,由于中国大豆产量远远无法满足国内市场需求,因此主要依赖进口转基因大豆,且进口量逐年增加,其中2020年全年进口量超过1.0×108t,较2019年增长13.3%,是中国本土产量的4倍以上[3]。目前,中国从美国、巴西等国进口的大豆主要是抗草甘膦转基因大豆,该品种是通过转基因技术将5-烯醇丙酮酰莽草酸-3-磷酸合成酶(EPSPS)导入到普通大豆品种中,使其高效表达EPSPS基因,由此可表现出对除草剂——草甘膦的高度耐受性[4]。由于其拥有耐除草剂、高产量、高收益等优点,所以被广泛种植。转基因大豆与普通大豆一样具有相对平衡的必需氨基酸组成、相近的蛋白质含量、价格更低廉,因此成为鱼粉的较佳替代品[5]。

然而,自从转基因作物问世以来,对其安全性的质疑从未停止。建鲤(Cyprinuscarpiovar.jian)是中国北方主要的淡水养殖鱼类之一,迄今尚未见国内外有关抗草甘膦转基因大豆对其影响的研究报道。因此,为评价抗草甘膦转基因大豆对建鲤的生长、抗氧化能力、血液生化和免疫指标的影响,笔者以抗草甘膦转基因大豆为日粮原料,并以非转基因大豆作对照,进行为期180 d的养殖试验,以探究抗草甘膦转基因大豆对建鲤生长性能、血清免疫相关指标及肝胰脏抗氧化能力的影响,旨在为后续研究提供参考依据。

1 材料与方法

1.1 试验用大豆

试验用抗草甘膦转基因大豆与非转基因大豆均购自山东省济南市饲料工业有限公司,其中:抗草甘膦转基因大豆产地为美国(CP4 EPSPS质量浓度为29.04 mg/g);非转基因大豆产地为中国吉林(CP4 EPSPS未检出)(以上结果由深圳微测检测有限公司检测)。两者的常规成分与氨基酸组成分别见表1和表2。

表1 非转基因大豆与抗草甘膦转基因大豆的常规营养组分(n=3) %Tab.1 Approximate nutrient composition of non-genetically modified soybean (NGMS) and glyphosate-resistant genetically modified soybean (GMS)

表2 非转基因大豆与抗草甘膦转基因大豆的氨基酸组成(n=3) %Tab.2 Amino acid composition of NGMS and glyphosate-resistant GMS

1.2 试验饲料配方及营养组成

2个试验组饲料分别添加15%和30%的抗草甘膦转基因大豆,编号分别为GM15(试验组1)和GM30(试验组2);2个对照组饲料添加同等比例的非转基因大豆,编号分别为NGM15(对照组1)和NGM30(对照组2)。并以鱼粉、花生饼和棉籽粕为其余蛋白源,以玉米油为主要脂肪源(除大豆外,其他饲料原料均由山东省济南市金三沅饲料有限公司提供),配制成4种等氮等脂饲料。将抗草甘膦转基因大豆与非转基因大豆进行高温处理,通过热失活法消除和破坏其中对高温不稳定的抗营养因子[6],即在120 ℃烘箱中加热10 min;各饲料原料分别粉碎过60目筛网,所有原料按配比混合后加入玉米油使其充分混匀并在85 ℃下用制粒机SZLH400(江苏省溧阳市中牧饲料科技有限公司)制成粒径3 mm的颗粒饲料并于4～8 ℃冷藏备用。饲料配方及基本营养组分见表3。

表3 饲料配方及营养水平 %Tab.3 Ingredient composition and nutrient levels of diets

1.3 试验用鱼与饲养管理

试验建鲤购自山东省济南市槐荫区长旗屯养殖场,为当年繁育的建鲤品种。挑选平均体质量(60±10) g、健康活泼的建鲤480尾随机分成4组,每组设3个平行,放养在12个直径1 m、容积为785 L的圆柱形玻璃缸水槽中,每4个水槽串联组成1个循环水过滤系统,每个水槽放40尾试验鱼。分组后使用对照组饲料暂养15 d,待建鲤生理状况趋于稳定后开始饲养试验。投饲率约2%,并根据摄食情况酌情调整,每日8:30、19:00投喂,每次的投喂量占总投喂量的50%。用温控仪控制水温在24～27 ℃,24 h持续充气,使水体溶解氧水平≥5.0 mg/L。养殖周期为180 d,养殖期间每3 d进行1次排污换水,每次换水量为总水量的50%。

1.4 样品采集

试验结束停食24 h取样,统计每个水槽中存活的建鲤数量,测量水槽中所有鱼的终末体长与终末体质量;在每个水槽中随机抽取3尾鱼,用200 mg/L的间氨基苯甲酸乙酯甲磺酸盐进行麻醉,留作后续取样。

血浆样品的制备:用5 mL一次性医用注射器尾部静脉取血,随后快速射入5 mL肝素钠抗凝管中,摇晃后静置10～20 min,4 ℃、3000 r/min(离心半径15 cm)离心20 min,制取血浆,测定时将同一水槽中3尾鱼的血浆样本混合作为1个样品,共12个样品,用于生化指标和免疫指标的测定。

组织样品的制备:将取完血液的建鲤用医用手术剪刀剖开,小心取出内脏团,置于装有生理盐水的玻璃培养皿中洗净,擦干表面水分后称量质量;随后置于玻璃培养皿中分离出肝胰脏、脾脏、肠道,分别称量质量;将肝胰脏保存于-80 ℃冰箱中,测定时将同一水槽中3尾鱼的肝胰脏样本混合作为1个样品,共12个样品,用于后续抗氧化指标的测定;取每尾鱼背部中间部分肌肉,保存在-80 ℃冰箱中,测定时将同一水槽中3尾鱼的肌肉样本混合作为1个样品,共12个样品,用于肌肉营养组分的测定。

1.5 样品的测定与分析

1.5.1 生长指标

生长性能指标质量增加率(wWGR,%)、饲料系数(RFC)、特定生长率(RSG,%/d)、蛋白质效率(RPE,%)、存活率(RS,%)按下式计算:

wWGR=(mf-mi)/mi×100%

(1)

RFC=mI/m

(2)

RSGR=(lnmf-lnmi)/t×100%

(3)

RSGR=m/(mI×P)×100%

(4)

RS=ns/n×100%

(5)

式中,mi与mf为建鲤初始平均体质量(g)和终末平均体质量(g),m为总增加质量,t为试验天数(d),mI为总摄食量(g),P为饲料粗蛋白质含量(%),ns为鱼存活的总数量(尾),n为放养鱼的总数量(尾)。

1.5.2 脏器指数

脏器指数:脏体指数(wVSI,%)、肝体指数(wHSI,%)、脾体指数(wSPI,%)、肠体指数(wISI,%),按下式计算:

wVSI=mv/me×100%

(6)

wHSI=ml/me×100%

(7)

wSPI=ms/me×100%

(8)

wISI=mb/me×100%

(9)

式中,mv为每尾建鲤内脏总质量(g),ml、ms和mb分别为肝胰脏质量(g)、脾脏质量(g)和肠道质量,me为每尾鱼的体质量(g)。

1.5.3 大豆、饲料和肌肉常规组分的测定

粗灰分参照GB/T 6438—2007在550 ℃高温炉中测定;粗蛋白质参照GB/T 6432—2018用全自动凯氏定氮仪CYKDN-DS(浙江省杭州市川一实验仪器有限公司)测定;粗脂肪参照GB/T 6433—2006用氯仿甲醇法测定;水分参照GB/T 6435—2014在105 ℃烘箱中烘干至恒等质量测定;大豆和饲料中氨基酸组成及含量参照GB/T 28246—2000,先进行样品前处理,再通过高效液相色谱法使用高效液相色谱仪iChrom 5100(大连市依利特分析仪器有限公司)测定;钙离子使用EDTA络合滴定法,利用络合剂乙二胺四乙酸盐与钙离子发生络合反应,测定EDTA的消耗量来计算其含量;总磷通过比色法,利用游离的磷在酸性环境中与钒钼酸铵生成黄色,使用分光光度计T9S(北京市谱析通用仪器有限责任公司)测定。

1.5.4 血清免疫指标和肝胰脏抗氧化指标的测定

所有肝胰脏抗氧化指标和部分血液免疫指标均采用南京建成生物工程研究所生产的试剂盒测定。WST-1法测定超氧化物歧化酶活性,钼酸铵法(可见光法)测定过氧化氢酶活性,ABTS法测定总抗氧化能力,通过测定分解过氧化氢(H2O2)的速率测定谷胱甘肽过氧化物酶活性,硫代巴比妥酸法测定丙二醛含量,比浊法测定溶菌酶活性,干粉法测定肿瘤坏死因子-α含量,干粉法测定干扰素-γ含量,干粉法测定白细胞介素-β含量。用全自动生化分析仪BK-280(山东博科生物产业有限公司)测定总蛋白、白蛋白含量和碱性磷酸酶、谷丙转氨酶、谷草转氨酶活性。

1.6 数据分析

所有试验数据均以平均值±标准差表示,采用Excel 2019和SPSS 26软件进行数据分析处理,采用单因素和双因素方差分析进行显著性检验,并采用邓肯法进行多重比较,显著水平为0.05。

2 结 果

2.1 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤生长性能的影响

各组鱼的初始体质量、终末体质量、体质量增加率、饲料系数、蛋白效率、特定生长率和存活率见表4。由表4可见,大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤的体质量增加率、饲料系数、蛋白效率、特定生长率和存活率均未见显著性影响(P>0.05)。

2.2 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤脏器指数的影响

各组鱼的脏体指数、肝体指数、肠体指数和脾体指数见表5。由表5可见,大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤的脏体指数、肝体指数、肠体指数和脾体指数均未见显著性影响(P>0.05)。

2.3 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤肌肉营养组分的影响

各组鱼肌肉的粗蛋白、粗脂肪、水分和灰分含量见表6。由表6可见,大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤肌肉中的粗蛋白、粗脂肪、水分和灰分含量均无显著影响(P>0.05)。

表6 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤肌肉营养组分的影响(湿基,n=3) %Tab.6 The effect of adding glyphosate-resistant GMS to the diet on nutrient composition in muscle of Jian carp C. carpio var. jian (wet basis)

2.4 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤肝胰脏抗氧化能力的影响

各组建鲤肝胰脏抗氧化能力指标的测定结果见表7。由表7可见,大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤肝胰脏的超氧化物歧化酶活性和总抗氧化能力均无显著影响(P>0.05)。大豆来源、添加水平与双因素交互作用会显著影响建鲤肝胰脏中过氧化氢酶活性,GM30组显著低于NGM30组(P<0.05)。大豆来源与添加水平会显著影响建鲤肝胰脏中谷胱甘肽过氧化物酶活性,表现为试验组的谷胱甘肽过氧化物酶活性随着添加水平的升高而增加(P<0.05),当添加水平相同时试验组均显著高于对照组(P<0.05);双因素交互作用对建鲤肝胰脏中谷胱甘肽过氧化物酶活性无显著影响(P>0.05)。大豆来源、添加水平及二者交互作用均对建鲤肝胰脏的丙二醛水平存在显著影响,表现为试验组与对照组的丙二醛水平随添加水平的升高而显著增加(P<0.05),且GM30组显著高于NGM30组(P<0.05)。

表7 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤肝胰脏抗氧化能力的影响(n=3)Tab.7 The effect of adding glyphosate-resistant GMS to the diet on antioxidant capacity in hepatopancreas of Jian carp C. carpio var. jian

2.5 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤血液生化指标的影响

各组建鲤血液生化指标的测定结果见表8。由表8可见,大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤血液中总蛋白、白蛋白质量浓度均不存在显著性影响(P>0.05)。试验组与对照组建鲤血液中谷丙转氨酶和谷草转氨酶活性随着大豆添加水平的升高而增强(P<0.05),大豆来源及双因素交互作用对建鲤血液中白蛋白质量浓度、谷丙转氨酶活性和谷草转氨酶活性均未见显著性影响(P>0.05)。

表8 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤血液生化指标的影响(n=3)Tab.8 The effect of adding glyphosate-resistant GMS to the diet on blood biochemical indices of Jian carp C. carpio var. jian

2.6 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤血液免疫指标的影响

各组建鲤血液生化指标的测定结果见表9。由表9可见,大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤血液中碱性磷酸酶活性均存在显著影响(P<0.05),表现为试验组和对照组碱性磷酸酶活性均随大豆添加水平的升高显著降低,且GM30组显著低于NGM30组。添加水平会对建鲤血液中溶菌酶活性产生显著影响(P<0.05),表现为试验组和对照组溶菌酶活性随大豆添加水平的升高而显著降低(P<0.05),大豆来源及双因素交互作用对建鲤血液中溶菌酶活性无显著影响(P>0.05)。大豆来源、添加水平及二者交互作用对建鲤血液中干扰素-γ、白细胞介素-β和肿瘤坏死因子-α质量浓度均无显著影响(P>0.05)。

3 讨 论

3.1 抗草甘膦转基因大豆对建鲤生长性能、脏器指数和肌肉营养组分的影响

国外有关转基因大豆对鱼类的影响研究最早开始于1996年,Hammond等[7]用添加5%和10%转基因大豆的饲料对斑点叉尾(Ictaluruspunctatus)进行70 d的投喂试验,发现其对该鱼的特定生长率、存活率和肌肉组分无显著性影响。随后在对大西洋鲑(Salmosalar)[8-11]、尼罗罗非鱼(Oreochromisniloticus)[12]和虹鳟(Oncorhynchusmykiss)[13]的研究中也发现类似结果。国内有关转基因大豆对鱼类的影响研究报道始于2008年,对罗非鱼[14-15]、青鱼(Mylopharyngodonpiceus)、草鱼(Ctenopharyngodonidella)、异育银鲫(Carassiusauratusgibelio)[16]的研究表明,饲喂转基因大豆对试验鱼的各项生长指标、肌肉营养组分无显著性影响。本试验结果亦表明,抗草甘膦转基因大豆对建鲤的各项生长指标、脏器指数、肌肉常规组分均无显著性影响,该结果与上述研究结论一致。

3.2 抗草甘膦转基因大豆对建鲤肝胰脏抗氧化能力的影响

肝胰脏是鲤科鱼类物质代谢和氧化还原反应的中心,其抗氧化能力的变化与机体的健康程度息息相关。机体内过量的自由基在超氧化物歧化酶的催化下,由超氧阴离子自由基转化为过氧化氢和氧气,接着过氧化氢酶将转化的过氧化氢分解为水和氧气,经过这一整个过程,体内过量的自由基被清除[17]。当体内的过氧化氢酶水平不足以处理体内过多的过氧化氢时,谷胱甘肽过氧化物酶会被激活,谷胱甘肽过氧化物酶作为抗氧化酶系统的一部分,其功能与过氧化氢酶相似,特异性催化还原性谷胱甘肽与机体内的过氧化氢反应,协助过氧化氢酶将其转化为水[18],因此,过氧化氢酶与谷胱甘肽过氧化物酶均属于超氧化物歧化酶的下游酶类。目前,有关抗草甘膦转基因大豆对鱼类肝胰脏抗氧化能力影响的报道较少,徐志远[19]在研究转基因糙米对鲤肝胰脏抗氧化能力的影响时发现,饲料中添加转基因糙米对鲤肝胰脏超氧化物歧化酶、过氧化氢酶、谷胱甘肽过氧化物酶活性以及丙二醛水平均无显著性影响;Hemre等[11]研究发现,转基因大豆对大西洋鲑血液与肝脏的谷胱甘肽过氧化物酶活性无显著性影响。本试验结果与以上结果有所不同:虽然饲料中添加15%和30%的抗草甘膦转基因大豆对建鲤肝胰脏超氧化物歧化酶活性无显著性影响,但可显著升高建鲤肝胰脏中谷胱甘肽过氧化物酶活性;30%的大豆添加水平使得试验组鱼的过氧化氢酶活性显著低于对照组,而丙二醛水平则显著高于对照组。由此可见,饲料中添加高水平的抗草甘膦转基因大豆,容易造成建鲤肝胰脏过氧化氢酶活性不足,从而刺激谷胱甘肽过氧化物酶的大量分泌,以分解过量的过氧化氢。

另外,由于丙二醛是体现组织细胞受损的间接指标,可以通过测定其含量来判断组织的健康情况[20]。本试验中添加30%抗草甘膦转基因大豆会显著升高丙二醛水平,这说明添加高水平的抗草甘膦转基因大豆会使建鲤肝胰脏的损伤程度加剧。推测其可能与抗草甘膦转基因大豆与非转基因大豆之间部分抗营养因子的差异有关。经北京谱尼测试集团股份有限公司检测,本试验所采用的抗草甘膦转基因大豆中,具有热稳定性的大豆球蛋白含量为79.92 g/kg,高于非转基因大豆的68.91 g/kg。

3.3 抗草甘膦转基因大豆对建鲤血液生化指标的影响

鱼类机体的健康与疾病等状况与血清蛋白有关,鱼类处于饥饿或患病状态时,其血清蛋白含量通常会因为此时机体的低代谢水平而降低,该指标可反映出机体的病理状态与免疫功能[21]。因此,肝脏的蛋白合成及代谢情况可以由总蛋白、白蛋白和球蛋白等血清蛋白的含量来反映[22]。刘梅等[15]对吉富罗非鱼研究发现,进口转基因和国产非转基因豆粕对其血清总蛋白、甘油三酯、肌酐等血液学指标无显著性影响。笔者通过饲养建鲤180 d发现,同等添加比例的转基因大豆组与非转基因大豆组相比,建鲤血清中总蛋白、白蛋白含量均无显著性差异,该结果与上述研究结果类似,这在一定程度上表明短期内饲喂转基因大豆未对建鲤的机体代谢造成负面影响。

谷丙转氨酶和谷草转氨酶是动物体内蛋白质代谢过程中的两种关键的代谢酶,主要存在于肝脏中。当肝细胞受损时,细胞膜通透性增加,肝脏中谷丙转氨酶、谷草转氨酶水平升高并被释放到血液中,因此血液中谷丙转氨酶、谷草转氨酶的活性是肝组织细胞健康的一个重要标志[23]。Sanden等[10]用添加了12.5%转基因大豆的饲料饲养大西洋鲑,发现转基因大豆组与非转基因大豆组鱼体血浆中谷草转氨酶、谷丙转氨酶活性水平在正常范围内且不存在显著性差异,表明该添加水平下转基因大豆不会对大西洋鲑的肝脏与肾脏产生显著影响。本试验中,当添加15%的大豆时,试验组与对照组的谷丙转氨酶和谷草转氨酶含量差异不显著,该结果与上述研究结果基本一致。彭翔等[24]在黑鲷(Acanthopagrusschlegelii)的研究中发现,高水平的大豆添加量会引起肝功能损伤,使得血液中谷丙转氨酶与谷草转氨酶活性增强;李秀玲等[25]在对卵形鲳鲹(Trachinotusovatus)的研究中得出了相似结论。在本试验中,随着大豆添加量的增加,各组建鲤谷丙转氨酶和谷草转氨酶含量也有所上升,推测是由于大豆添加量的上升使得机体蛋白代谢压力提高,同时造成肝功能受损,谷丙转氨酶和谷草转氨酶由肝脏释放进入血液中,引起机体血液中转氨酶的活性增强所致。

3.4 饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对建鲤血液免疫能力的影响

碱性磷酸酶作为一种非特异性磷酸水解酶,在鱼体的代谢活动和机体免疫中起重要作用,它能直接参与机体中磷酸基团的转移和代谢,对动物的生存具有重要意义[26]。Eissa等[27]对大鼠研究发现,其碱性磷酸酶活性随饲料中抗草甘膦转基因大豆添加水平的升高而增强且显著高于非转基因对照组;刘莎莎等[28]对AA肉仔鸡研究发现,抗草甘膦转基因大豆组的碱性磷酸酶水平与非转基因大豆组无显著性差异。目前有关转基因大豆对鱼类碱性磷酸酶活性影响的研究尚未见报道。本试验结果显示,当饲料中大豆添加水平达30%时,试验组与相应的对照组建鲤的碱性磷酸酶活性均显著降低,这说明高替代水平的大豆会使得肝脏代谢压力增大,降低鱼体的免疫功能;同时还发现,试验组建鲤的碱性磷酸酶又显著低于相应的对照组,这说明高添加量的抗草甘膦转基因大豆可以显著影响建鲤的碱性磷酸酶活性。可见,饲料中添加低水平(15%)的抗草甘膦转基因大豆不会影响建鲤的肝胰脏代谢,若添加水平过高(30%)将在一定程度上降低建鲤的免疫能力。

溶菌酶是一种专一性地作用于微生物细胞壁的天然无毒性碱性球蛋白,具有抑菌、抗炎、抗氧化、增强机体免疫力等作用,同时还能分解、消化和吸收微生物,将其作为自身的营养成分[29]。Bakke-Mckellep等[30]以普通大豆为对照,用含17%的抗草甘膦大豆饲喂大西洋鲑稚鱼3个月,发现其幽门盲囊、中肠、远端肠、肝脏、肾脏、头肾和脾脏中的溶菌酶在各组间均无显著性差异;王崇等[31]在研究非转基因大豆对异育银鲫免疫性能的影响时发现,血清中溶菌酶活性随大豆添加量的增加而呈下降趋势;刘勇等[32]在研究非转基因大豆对奥尼罗非鱼(Oreochromisaureus×O.niloticus)免疫功能时发现,大豆替代水平增高会使血清中溶菌酶活性显著降低。本试验结果显示,转基因大豆和非转基因大豆添加量均为15%时,鱼体血液中的溶菌酶含量差异不显著,当大豆添加量为30%时,各组建鲤血液中溶菌酶水平均显著降低,说明在饲料中添加适量的大豆不影响建鲤的溶菌酶活性,而添加过量的大豆将会对其免疫功能造成一定程度的损伤,但该结果与是否为转基因大豆无关。可见,该结论与以上研究结果相似。

干扰素-γ诱导巨噬细胞、单核细胞、树突细胞等主要组织相容性复合体Ⅱ类分子的表达,提高动物的细胞免疫能力,同时还有抗肿瘤的作用[33]。白细胞介素-β是一种重要的炎症和免疫原性细胞因子,与机体的炎症及免疫调节代谢等息息相关[34]。肿瘤坏死因子-α同样也是重要的炎症因子,在抵抗外源微生物感染以及清除受感染的细胞等方面发挥着重要的作用[35]。徐志远[19]发现,转基因糙米对鲤的干扰素-γ、白细胞介素-β和肿瘤坏死因子-α含量均无显著影响;谭建庄[36]研究发现,转基因大豆对肉仔鸡的干扰素-γ含量无显著性影响;Finamore等[37]研究发现,转基因玉米对幼鼠与成年大鼠的干扰素-γ、白细胞介素-β和肿瘤坏死因子-α含量都不存在显著影响。本试验中,当大豆添加量为30%时,两组的白细胞介素-β和肿瘤坏死因子-α含量均有升高趋势但差异不显著,推测可能是大豆添加量的升高使得具有热稳定性的抗营养因子例如大豆抗原蛋白含量的上升,从而提高促炎性因子白细胞介素-β和肿瘤坏死因子-α的表达,但影响不显著,该结果与上述研究结果基本一致,这说明抗草甘膦转基因大豆对建鲤的以上血液免疫因子无显著影响。

4 结 论

(1)饲料中添加15%和30%抗草甘膦转基因大豆饲喂建鲤180 d,对其生长指标、脏器指数和肌肉常规营养组分均未产生显著性影响(P>0.05)。

(2)饲料中添加15%和30%抗草甘膦转基因大豆饲喂建鲤180 d后,试验组的建鲤肝胰脏谷胱甘肽过氧化物酶活性相比对照组显著升高(P<0.05);30%抗草甘膦转基因大豆添加组的建鲤与30%非转基因大豆添加组相比,其肝胰脏过氧化氢酶活性显著降低,而丙二醛水平显著升高(P<0.05)。这说明饲料中抗草甘膦转基因大豆可能会对建鲤肝胰脏的抗氧化能力产生影响,然而由于大豆中所含的抗营养因子也可能影响其抗氧化指标,因此造成该差异的根本原因尚待进一步探究。

(3)饲料中添加抗草甘膦转基因大豆对溶菌酶活性及干扰素-γ、白细胞介素-β和肿瘤坏死因子-α含量均无影响,而30%抗草甘膦转基因大豆添加组的建鲤血液中碱性磷酸酶活性与30%非转基因大豆添加组相比显著降低。由于碱性磷酸酶活性的差异仅在较高添加水平(30%)中体现,可见饲料中添加高水平(30%)的抗草甘膦转基因大豆对建鲤血液中碱性磷酸酶活性具有一定程度的影响。