时间:2024-05-30
马林,焦丽丽,张晓瑜,刘淑莹,2*
(1.长春中医药大学吉林省人参科学研究院;2.中国科学院长春应用化学研究所,吉林长春 130000)
人参花寡糖抗衰老作用研究
马林1,焦丽丽1,张晓瑜1,刘淑莹1,2*
(1.长春中医药大学吉林省人参科学研究院;2.中国科学院长春应用化学研究所,吉林长春 130000)
目的:探讨人参花寡糖抗衰老作用及其机制。方法:采用D-Gal腹腔注射制备衰老小鼠模型,检测人参花寡糖的抗衰老作用。结果:与空白组相比,人参花寡糖组小鼠血清、肝脏和脑中的SOD,GSH-Px和CAT活力与D-Gal组比显著提高,血清中MDA含量显著下降,10毫克/公斤作用最明显。结论:人参花寡糖可恢复D-半乳糖诱导的氧化损伤,提高氧化酶活力,减少MDA在体内的积累。
人参花寡糖;抗衰老;抗氧化
研究表明,衰老与自由基损伤密切相关[1]。过量自由基能损伤 DNA,影响细胞膜结构和功能[2]。细胞内存抗氧化酶系统,能够清除过多的自由基,维持细胞内的氧化还原水平[3]。
人参花是五加科人参属人参 (Panax ginseng C.A.Mey.)的花蕾。目前,人参花寡糖相关的研究较少。课题组已发现人参花寡糖具有良好的体外抗氧化活性。基于此,本研究拟对人参花的体内抗氧化活性进行深入研究。
1.1 材料
超氧化物歧化酶 (SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶 (GSHPx)、过氧化氢酶(CAT)和丙二醛(MDA)试剂盒购于南京建成生物工程研究所。
1.2 人参花寡糖的制备
干燥的人参花粉末用乙醇,80℃提取两次(2h/次),滤过。残渣加10倍水,70℃提取两次 (2小时/次),合并滤液。滤液透析(Mw<3500Da),收集透析外液,浓缩,冻干,得人参花寡糖。
1.3 动物模型的建立及分组
雄性昆明小鼠(20±2克,8周龄),自由摄取食物、水。小鼠随机分为 6组,按照表1分组并连续灌胃42天。
1.4 生化指标检测
表1 实验动物处理方式
表2 小鼠血清中抗氧化指标
表3 小鼠肝脏中抗氧化指标
每天记录小鼠体重,末次给药 24小时后,小鼠眼球取血,离心,收集血清。移除肝脏,用生理盐水清洗后制成 10%(w/ v)匀浆,离心,收集上清[4]。血清和肝脏中 SOD、CAT、TAOC、GSH-Px的活力和MDA水平按试剂盒说明书操作。
2.1 人参花寡糖对衰老小鼠血清SOD、GSH-PX、CAT活性及MDA产量影响
由表2可知,与空白组相比,D-gal组小鼠血清中 SOD,GSH-Px和CAT活性均显著下降 (P<0.05),MDA含量显著增加(P<0.05)。人参花寡糖组小鼠的酶活力有所提高,且呈剂量依赖性。SOD、GSH-Px和CAT酶活力呈现上升趋势;与D-gal组相比,均显著增加,MDA含量显著降低。
2.2 人参花寡糖对衰老小鼠肝脏SOD、GSH-PX、CAT活性影响
人参花寡糖组小鼠肝脏中SOD和CAT活力明显提高,且低、中剂量组与D-gal组呈现显著差异(P<0.05);GSH-Px活力也明显提高。
SOD、GSH-Px和CAT是抑制自由基最重要的抗氧化酶[5]。本实验结果表明人参花寡糖给药后能增强小鼠内源性抗氧化酶活性,降低MDA的水平,能够减轻D-半乳糖诱导的脂质过氧化和氧化应激程度[6]。人参花寡糖能够通过提高体内抗氧化酶活力和降低MDA含量,D-半乳糖诱导的氧化损伤有一定的修复作用,进而实现抗衰老作用。
[1]陈勤.抗衰老研究实验方法[M].北京:中国医药科技出版社,1996:32-33.
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吉林省科技厅重点实验室探索项目(20160101334JC)
S351.1
A
10.14025/j.cnki.jlny.2016.21.034
马林,硕士,长春中医药大学吉林省人参科学研究院,研究方向:中药有效成分与应用开发。
刘淑莹,博士,长春中医药大学吉林省人参科学研究院,中国科学院长春应用化学研究所,教授,博士生导师,研究方向:中药化学。
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