当前位置:首页 期刊杂志

超顺磁性氧化铁纳米粒子SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD的64Cu标记、纯化及生物分布

时间:2024-07-28

史旭东,王 晓,申一鸣,孙钰林,梁积新,陈玉清,沈浪涛,*

1.中国原子能科学研究院 同位素研究所,北京 102413;2.原子高科股份有限公司,北京 102413

超顺磁性氧化铁纳米粒子(SPION)以其较高的生物相容性和优良的磁学性质广泛应用于生物医学领域,如靶向药物载体、核磁共振成像造影剂、磁性细胞分离、DNA的纯化等[1]。以SPION为平台构建将正电子发射计算机断层显像(PET)探针和磁共振(MRI)造影剂相结合的PET/MRI双模态显像探针是当前极具挑战性的工作。SPION具有较强的可修饰性,可以通过各种手段将发射正电子的核素、多肽或抗体等靶向分子连接在其上面[2-4]。为了研发具有肿瘤靶向作用的PET/MRI双模态显像探针,本课题组使用多巴胺和聚乙二醇(PEG)衍生物对SPION进行了表面修饰,并在纳米粒子表面偶联了双功能螯合剂1,4,7,10-四氮杂环十二烷-1,4,7,10-四羧酸(DOTA)和精氨酸-甘氨酸-苯丙氨酸-半胱氨酸环肽(cyclo(Arg-Gly-Asp-d-Phe-Cys,RGD),获得了平均粒径为(57±15)nm的PET/MRI双模态显像探针前体SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD(图1)[5-6]。近年来,作为优良的正电子显像核素,64Cu(T1/2=12.7h;β+:0.653MeV,17.4%;β-:0.578MeV,39%)正受到越来越多的关注。高比活度的64Cu可通过医用加速器生产。64Cu不但用于PET显像中,也用于放射性治疗药物的研究中。64Cu半衰期较长,可通过DOTA等双功能螯合剂与靶向生物分子偶联[7-9],适用于耗时较长的合成操作,非常适合制备过程较为复杂的双模态显像探针的合成。但目前,磁性纳米粒子的64Cu标记率不是很高(20%~60%)[10-11]。因此,如何在磁性纳米粒子体系中,对64Cu的标记条件进行优化,从而获得较高的标记率,并选择适合于放射性纳米粒子纯化的手段,尽可能提高放化纯以满足体内研究的需要是急需解决的问题之一。

图1 超顺磁性氧化铁纳米粒子的结构示意图[5-6]Fig.1 Structure of SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD[5-6]

鉴于64Cu与双功能螯合剂DOTA的良好螯合性质及与纳米材料生物特性的匹配性,本工作拟使用64Cu对超顺磁性氧化铁纳米粒子SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD进行放射性标记,并对标记、纯化条件进行摸索,对其体外稳定性和脂水分配系数进行测定,还通过该标记物在正常小鼠体内生物分布的研究,揭示其主要的代谢方式。

1 实验部分

1.1 试剂和仪器

超顺磁性氧化铁纳米粒子SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD由本实验室制备[5-6];64CuCl2,由原子高科股份有限公司提供;快速硅胶簿层层析纸(ITLC-SG),美国Pall公司;PD-10(Sephadex G-25)柱,美国GE公司。人血清白蛋白(HSA,质量分数为97%),上海莱士血液制品股份有限公司;二乙基三胺五乙酸(DTPA)、磷酸盐缓冲液(PBS)、醋酸铵(CH3COONH4)及其它化学试剂均为分析纯,国药集团化学试剂有限公司。昆明小鼠15只,雌性,18~20g,北京华阜康生物科技股份有限公司。

1470自动γ计数器,美国Perkin Elmer公司;CRC-15放射性活度计,美国Capintec公司;AR-2000薄层扫描仪,德国Eckert Ziegler公司。

1.2 64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD的制备

取100μL SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD醋酸铵缓冲溶液(pH=6.5,0.1mol/L)加 入2mL EP管中,加入10μL(3.7MBq)64CuCl2,涡旋混匀,反应在一定温度条件下温育一段时间。

1.3 标记率和放化纯的测定方法

标记物的标记率(Y)及放化纯(RCP)均采用快速薄层层析法(ITLC)测定。取2μL反应液点样于ITLC-SG纸(10mm×100mm)上,于10%醋酸铵/甲醇体积比为1∶1的展开体系中上行展开,空气中自然晾干。用放射性薄层扫描仪进行扫描,计算标记率或放化纯。在展开体系中,游离的64Cu2+或64Cu-DTPA随溶剂移到层析纸前沿,其Rf为0.9~1.0。而标记物64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD停留在原点,Rf为0~0.1。

1.4 最佳标记条件的选择

1.4.1 配体浓度对标记率的影响 分别取100μL Fe浓度为1.78、3.56、7.12、14.2mmol/L的SPIONdopa-PEG-DOTA/RGD的醋酸铵缓冲溶液(pH=6.5,0.1mol/L)加入2mL EP管中,加入10μL(3.7MBq)64CuCl2,涡旋混匀,50℃条件下温育60min,快速薄层层析法测定标记率。

1.4.2 反应时间对标记率的影响 取100μL Fe浓度为3.56mmol/L的SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD醋酸铵缓冲溶液(pH=6.5,0.1mol/L)加入2mL EP管中,加入10μL(3.7MBq)64CuCl2,涡旋混匀,50℃条件下温育,分别在反应40、50、60、70min后取样监测,快速薄层层析法测定标记率。

1.4.3 温度对标记率的影响 取100μL Fe浓度为3.56mmol/L的SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD醋酸铵缓冲溶液(pH=6.5,0.1mol/L)加入2mL EP管中,加入10μL(3.7MBq)64CuCl2,涡旋混匀,分别在40、50、60℃条件下温育60min,快速薄层层析法测定标记率。

1.5 标记物64 Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD的纯化

取500μL Fe浓度为3.56mmol/L的SPIONdopa-PEG-DOTA/RGD醋酸铵缓冲溶液(pH=6.5,0.1mol/L),加入2mL EP管中,并加入100μL(18.5MBq)64CuCl2,涡旋混匀,在50℃条件下温育60min。反应结束后待标记反应混合液冷却至室温,加入100μL 10mmol/L DTPA溶液,室温下温育20min,结合游离的64Cu。

标记物均采用PD-10柱排阻纯化:将PD-10柱用磷酸盐缓冲溶液(PBS,0.1mol/L,pH=7.2)淋洗平衡后,加入反应混合物,PBS作为淋洗液,以每管0.5mL收集洗脱液,用活度计测量每管中的放射性活度。

1.6 标记物的体外稳定性考察

PBS体系:取64Cu标记的氧化铁纳米粒子约3.7×105Bq,置于200μL PBS中(pH=7.2),涡旋混匀,37℃条件下,温育3、6、12h后分别采用快速薄层层析法测定放化纯,观察其体外稳定性。

HSA体系:取64Cu标记的氧化铁纳米粒子约3.7×105Bq,置于200μL 10%的人血清白蛋白HSA中,涡旋混匀,37℃条件下,温育3、6、12h后,依次取50μL混合液,加入50μL乙腈,涡旋1min,常温下5 000r/min下离心10min,取上清液,快速薄层层析法测定放化纯,观察其体外稳定性。

1.7 脂水分配系数的测定

取100μL标记物的磷酸盐缓冲溶液,加入到含3mL正辛醇和3mL磷酸盐缓冲溶液(pH=7.2、0.01mol/L)的10mL离心试管中,盖好后充分震荡5min,在离心机中离心分层5min,转速为4 000r/min。分别取有机相和水相各500μL于干净测量管中,在γ计数器中分别测量其放射性计数,由有机相和水相的放射性计数的比值来计算脂水分配系数P,计算lg P。重复3次,取平均值。

1.8 标记物在正常小鼠体内的生物分布

取100μL64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD的磷酸盐缓冲溶液,活度约为5.6×105Bq,经尾静脉注射到15只昆明小鼠体内,在注射后0.5、1、3、6、12h眼眶取血,处死并进行解剖,取心脏、肝脏、脾、肺、肾、胃、小肠、肌肉、股骨、血等器官或组织称重,γ计数器上测量其计数。经衰变校正后计算每克组织的百分注射剂量率(%ID/g)。

2 结果与讨论

2.1 最佳标记条件的选择

通过分别改变反应体系的配体用量、反应时间和温度等因素,确定64Cu-SPION-dopa-PEGDOTA/RGD的最佳标记条件。

2.1.1 配体Fe浓度对标记率的影响 在反应温度50℃、反应时间60min的条件下,考察配体Fe浓度(c(Fe))对标记率的影响,结果示于图2(a)。由图2(a)可知:配体用量对64Cu的标记率的影响较大,当配体中Fe浓度为1.78mmol/L时,标记率并不理想,仅为34%;当配体中Fe浓度增加到3.56mmol/L时,标记率得到了显著提高,达到了63%。然而,在继续增大配体量时,标记率没有呈现增大的趋势,反而出现了大幅的下降。因此,选择配体的Fe浓度为3.56mmol/L。

2.1.2 反应时间对标记率的影响 在配体Fe浓度3.56mmol/L、反应温度50℃条件下,考察反应时间对标记率的影响,不同反应时间对标记率的影响示于图2(b)。由图2(b)可知:反应时间的增长有利于标记率的提升,50min之后逐渐趋于稳定。因此,选择反应时间为60min。

2.1.3 温度对标记率的影响 在配体Fe浓度3.56mmol/L、反应时间60min条件下,考察反应温度对标记率的影响,不同温度条件下标记率的测定结果示于图2(c)。根据文献[12],将初始反应温度定在40℃,标记率为31%。反应温度提高到50℃时,标记率达到了63%。由于氧化铁纳米粒子前体的稳定性受温度影响较大,高温条件下容易发生团聚甚至出现沉淀的现象,当温度升高到60℃时已经出现标记率的下降,因此,没有进行更高温度条件下的标记实验,反应温度定在50℃。文献[10-11]报道,纳米材料的64Cu标记率在20%~60%之间。通过配体Fe浓度、反应时间和温度对标记率的影响研究发现,在优化条件下,64Cu的标记率可提高至63%。虽然,在文献中未见64Cu标记率较低的原因分析,但我们推测,在纳米材料体系中不能通过无限制地提高温度的方式来提高标记率,因为附着在纳米材料表面的高分子随温度升高将脱落,导致团聚乃至沉淀现象;此外,由于结合在纳米材料上的螯合基团(DOTA)是有限的,并且这些螯合基团还可能被PEG覆盖,处于不利于与64Cu结合的状态,因此,即使提高配体Fe的浓度也不能提高标记率。这些因素都可能是导致纳米材料体系中64Cu标记率不高的原因。

图2 配体Fe浓度(a)、反应时间(b)、反应温度(c)对标记率(Y)的影响Fig.2 Influences of ligand concentration(a),reaction time(b)and reaction temperature(c)on labeling efficiency

2.2 标记化合物的纯化

标记物采用PD-10柱纯化。在标记反应混合溶液中加入过量的DTPA,结合游离的和非特异结合在纳米材料上的64Cu[13-14],而64Cu-DTPA与标记物64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD在PD-10柱中的保留时间存在明显差异,通过收集不同时间点的洗脱液可以实现标记物的纯化。纯化后产物经薄层层析法检测后发现,标记物基本全部集中在原点(图3(b)),Rf=0~0.1。这说明64Cu已成功标记至SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD,且放化纯大于95%。在本研究的初始阶段,参考64Cu标记DOTA及其衍生物的条件进行标记并直接采用排阻色谱进行分离,但通过纸色谱最终放化纯的分析发现很难将标记物完全分离。在纯化过程中没有加入DTPA,直接将标记反应混合溶液在PD-10柱上洗脱,但最终的标记物放化纯(图3(a))并不理想,只有71%。这说明DTPA对游离铜的螯合作用对于该标记物的分离十分重要。DTPA的作用可能与文献[13-14]的解释类似,即通过DTPA与PEG的竞争,除去在PEG上非特异结合的64Cu,使之转化为64Cu-DTPA,从而极大地改善了分离效果。

2.3 标记物的体外稳定性考察

放射性药物必须要有足够的体外稳定性。64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD的体外稳定性检测结果示于图4。由图4可知,标记物在37℃下温育,在0.1mol/L磷酸盐缓冲溶液(PBS)和体积分数为10%的人血清白蛋白(HSA)溶液中均比较稳定,放置12h后,放化纯(RCP)仅略有下降,但仍大于90%。说明该标记物的体外稳定性良好,可以用于进一步的体内研究。

图4 64 Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD在HSA和PBS中的稳定性Fig.4 Stability of 64 Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD in HSA and PBS

2.4 脂水分配系数的测定

64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD的 脂水分配系数P为0.054 40,lg P值为-1.27,药物表现出较高的水溶性,这归结于PEG衍生物对纳米粒子的表面修饰,从而有助于药物在体内的转运分布,延长其体内的循环半衰期,从而使该探针更有效地作用于靶点。

2.5 标记物在正常小鼠中的体内分布

正常小鼠体内64Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD在各器官的生物分布结果列入表1。由表1可知:放射性标记物在肝脏((8.42±0.32)%ID/g,30min)、脾脏((3.55±0.51)%ID/g,30min)和肾((5.99±0.61)%ID/g,30min)中的吸收最高,而其他器官对药物的摄取相对较低,表明该标记物主要通过肝、脾代谢,肾脏排泄,这与粒径小于100nm的纳米粒子在体内的生物分布和代谢途径基本一致[15-16]。体内的网状内皮系统(RES,包括肝、脾、肺和骨髓等组织)具有丰富的吞噬细胞,可将一定大小的纳米颗粒作为异物而摄取,较大的颗粒由于不能滤过毛细血管,而被截留于某些部位。粒径100~200nm的颗粒很快被网状内皮系统的巨噬细胞从血液中清除,最终到达kupffer细胞的溶酶体中;50~100nm的颗粒可以进入肝实质细胞,而小于50nm的纳米粒子则通过淋巴系统传递到脾和骨髓中[17]。

表1 64 Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD在正常小鼠体内分布Table 1 Biodistribution of 64 Cu-SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD in normal mice

3 结 论

以超顺磁性氧化铁纳米粒子SPION-dopa-PEG-DOTA/RGD为前体,使用正电子核素64Cu对其进行了放射性标记。通过改变反应体系的配体用量、反应时间和温度等因素,得到优化后的标记条件为:配体中Fe浓度为3.56mmol/L,反应时间为60min,反应温度为50℃,经优化后的标记率可达到63%。通过加入DTPA螯合游离和非特异结合在纳米材料上的64Cu并使用PD-10柱进行纯化后,得到了放化纯大于95%的标记物,解决了氧化铁纳米材料64Cu标记物不易纯化的难题。该标记物在12h内表现出了较高的体外稳定性且具有良好的水溶性。正常小鼠体内的生物分布揭示了其主要的代谢方式,该标记物可用于后续的PET/MRI双模态显像的研究。

[1]Reddy L H,Arias J L,Nicolas J,et al.Magnetic nanoparticles:design and characterization,toxicity and biocompatibility,pharmaceutical and biomedical applications[J].Chem Rev,2012,112(11):5818-5878.

[2]Rafael T,Richard T,Philip J,et al.Synthesis of64CuⅡ-bis(dithiocarbamatebisphosphonate)and its conjugation with superparamagnetic iron oxide nanoparticles:in vivo evaluation as dual-modality PETMRI agent[J].Angew Chem Int Ed,2011,50(24):5509-5513.

[3]Xie J,Chen K,Huang J,et al.PET/NIRF/MRI triple functional iron oxide nanoparticles[J].Biomaterials,2010,31(22):3016-3022.

[4]Choi J,Park J,Cheon J,et al.A hybrid nanoparticle probe for dual-modality positron emission tomography and magnetic resonance imaging[J].Angew Chem Int Ed,2008,47(33):6259-6262.

[5]Shi X D,Shen L T.The design and synthesis of potential PET/MRI dual-modal imaging agents based on MFe2O4(M=Fe,Mn)nanoparticles[J].J Nucl Med,2014,55(Suppl.):1026.

[6]史旭东,沈浪涛.用于PET/MRI双模式显像剂的磁性氧化铁纳米粒子的合成和性质初步研究[G]∥中国原子能科学研究院年报.北京:中国原子能科学研究院,2012:179-180.

[7]Panizzi P,Nahrendorf M,Weissleder R,et al.In vivo detection of staphylococcus aureus endocarditis by targeting pathogen-specific prothrombin activation[J].Nat Med,2011,17(9):1142-1146.

[8]Joanne E M,James R B,David M C.Functional imaging of human epidermal growth factor receptor 2-positive metastatic breast cancer using64Cu-DOTA-trastuzumab PET[J].J Nucl Med,2014,55(1):23-29.

[9]Elena R,Réjean L,Brigitte G,et al.68Ga/DOTAand64Cu/NOTA-phthalocyanine conjugates as fluorescent/PET bimodal imaging probes[J].Bioconjugate Chem,2013,24(9):1624-1633.

[10]Benjamin R,David L,Angelique Y.Synthesis of64Cu-labeled magnetic nanoparticles for multimodal imaging[J].Bioconjugate Chem,2008,19(7):1496-1504.

[11]Yang M,Cheng K,Cheng Z,et al.Affibody modified and radiolabeled gold-iron oxide hetero-nanostructures for tumor PET,optical and MR imaging[J].Biomaterials,2013,34(11):2796-2806.

[12]Lee H Y,Li Z B,Chen X Y,et al.PET/MRI dualmodality tumor imaging using arginine-glycine-aspartic(RGD)-conjugated radiolabeled iron oxide nanoparticles[J].J Nucl Med,2008,49(8):1371-1379.

[13]Fukukawa K,Rossin R,Hagooly A,et al.Synthesis and characterization of core-shell star copolymers for in vivo PET imaging applications[J].Biomacromolecules,2008,9(4):1329-1339.

[14]Pressly E D,Rossin R,Hagooly A,et al.Structural effects on the biodistribution and positron emission tomography(PET)imaging of well-defined64Cu-labeled nanoparticles comprised of amphiphilic block graft copolymers[J].Biomacromolecules,2007,8(10):3126-3134.

[15]Natarajan A,Gruettner C,Ivkov R,et al.Nanoferrite particle based radioimmuno nanoparticles:binding affinity and in vivo pharmacokinetics[J].Bioconjugate Chem,2008,19(6):1211-1218.

[16]Glaus C,Rossin R,Bao G.In vivo evaluation of64Cu-labeled magnetic nanoparticles as a dualmodality PET/MR imaging agent[J].Bioconjugate Chem,2010,21(4):715-722.

[17]Laurent S,Forge D,Muller R.Magnetic iron oxide nanoparticles:synthesis,stabilization,vectorization,physicochemical characterizations,and biological applications[J].Chem Rev,2008,108(6):2064-2110.

免责声明

我们致力于保护作者版权,注重分享,被刊用文章因无法核实真实出处,未能及时与作者取得联系,或有版权异议的,请联系管理员,我们会立即处理! 部分文章是来自各大过期杂志,内容仅供学习参考,不准确地方联系删除处理!