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(1.北京市理化分析测试中心,有机材料检测技术与质量评价北京市重点实验室,北京市科学技术研究院分析测试技术重点实验室,北京 100089;2.中国标准化研究院,北京 100191)
葛为多年生豆科缠绕藤本植物,侧蔓和须根多,但块根深生,呈纺锤形或长棒形,表皮为淡黄色,有皱褶,是主要食用和药用部分。葛根为野葛(Pueraria Lobata(Willd.) Ohwi)或粉葛(P. thomsomi Benth)的干燥根,含有异黄酮类、三萜类、芳香类等活性成分。其中异黄酮类化合物是葛根的主要化学成分。葛根味甘、辛,性凉,归肺、胃经,具有解肌退热、透疹、生津止渴、升阳止泻等功效[1],被广泛用于保护心脑血管[2-4]、治疗感冒[5]、Ⅱ型糖尿病[6]、腹泻等中药复方制剂中,用量极大,是制剂的重要成分。其中葛根素是葛属植物的特有成分,亦是主要有效成分,具有扩张冠状动脉血管,降低血脂,增强心肌收缩力,降低血压,防治高血压头晕、头痛、颈项疼痛[7-12]等功效。
市场上葛根相关的产品种类繁多,其中葛根素作为葛根主要的化学成分,其含量的检测需要该标准样品作为检测对照;同时,在葛根相关活性研究和产品开发中,葛根素也是重要的研究对象,因此迫切需要开展该标准样品的研制工作。本研究采用高速逆流色谱(high-speed countercurrent chromatography,HSCCC)技术制备葛根素,通过紫外吸收光谱(ultraviolet absorption spectrometry,UV)、红外光谱(infrared spectroscopy,IR)、质谱(mass spectrometry,MS)和核磁共振(nuclear magnetic resonance,NMR)波谱等方法进行结构鉴定,并开展均匀性检验、稳定性检验、定值研究,最终得到纯度大于98%、扩展不确定度小于1%的葛根素标准样品。
KQ-250E超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司);TBE-300B半制备型高速逆流色谱仪(上海同田生物技术有限公司);LC-20高效液相色谱仪(日本Shimadzu公司);RE-2000旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂);ALPHR1-2冷冻干燥机(德国Marin Christ公司);Spectrum400傅立叶变换红外-近红外光谱仪(美国PerkinElmer公司);1100 Series LC/MSD SL(美国Agilent公司),超导核磁共振谱仪(德国Bruker公司)。
乙酸乙酯,甲醇,正丁醇(分析纯,国药集团化学试剂有限公司);乙腈(色谱纯,美国Fisher Scientific公司);葛根提取物(湖南长沙远航生物制品有限公司)。
1.2.1 葛根素样品制备与分装
HSCCC溶剂体系为乙酸乙酯∶正丁醇∶水(2∶1∶3,v/v),转速900 r/min,流速1.5 mL/min,分离温度25℃,检测波长254 nm。根据HSCCC图谱收集目标化合物,旋转蒸发去除溶剂,冷冻干燥后得到高纯度葛根素样品。
将葛根素样品采用2 mL棕色样品瓶进行分装。分装是在相对独立和洁净空间进行的,以每瓶10 mg分装,用十万分之一天平称量,样品共100 瓶,以1~100号计。分装好的样品瓶放在4℃冰箱中长期保存。
1.2.2 纯度分析
配制浓度为0.5 mg/mL的葛根素样品溶液,采用HPLC峰面积归一法对葛根素进行纯度分析。色谱柱为Wondasil C18(5 μm, 150×4.6 mm) ;流动相∶乙腈∶水=12∶88;流速:1.0 mL/min;柱温:30℃;检测波长:254 nm;运行时间:30 min。
1.2.3 结构确证
采用UV、IR、MS、NMR进行结构确证。UV分析条件:甲醇作为溶剂,浓度为0.1 mg/mL,扫描范围200~400 nm;IR分析条件:KBr压片法,扫描范围400~4000 cm-1。MS分析条件:正、负两种离子模式,锥孔气流速40 L/min,毛细管电压3.0 kV,脱溶剂温度320℃,质量扫描范围m/z150~1000。NMR分析条件:溶剂为氘代丙酮加重水,采集13C-NMR和1H-NMR谱图。
1.2.4 均匀性、稳定性、定值研究
依据GB/T 15000.3—2008《标准样品工作导则(3)标准样品:定值的一般原则和统计方法》[13]开展均匀性检验、稳定性检验、定值研究工作。均匀性:采用方差分析法进行纯度均匀性检验,判断葛根素的均匀性是否合格。稳定性:将葛根素样品避光贮存于4℃,开展12个月长期稳定性的研究。采用直线作为经验模型,观察斜率值是否有显著变化,预测葛根素的稳定性变化。定值:采用多个实验室协作试验的联合定值方式,分别对随机抽取8个样品进行检测,对所采集的测定结果采用格拉布斯(Grubbs)检验法进行检验,计算葛根素标准样品的标准值和不确定度。
采用HSCCC乙酸乙酯∶正丁醇∶水(2∶1∶3,v/v)溶剂体系分离纯化得到高纯度葛根素样品(图1),采用HPLC对葛根提取物和分离所得单体进行洗脱,254 nm检测波长下,应用峰面积归一法计算纯度值,分离所得单体葛根素的纯度为99.53%。(图2)
图1 葛根素HSCCC图
图2 葛根素HPLC图A.葛根提取物;B.分离所得单体
采用UV、 IR、 MS、NMR对葛根素进行结构鉴定。UV最大吸收波长为250 nm(图3); IR吸收峰(图4):3240(-O-H),1634(-C=O),1515,1446(Ar),1260,1212,1178,1082(醚-C-O)。通过ESI-MS正负离子模式扫描(图5)可得:[M+Na]+=439.2,[M-H]-=415.1,故测定的相对分子质量为416。1H-NMR和13C-NMR测试结果见图6,通过对数据进行归属(表1、表2)。与文献[14,15]进行比较,确定该样品为葛根素。
图3 葛根素紫外吸收光谱图
图4 葛根素红外光谱图
图5 葛根素质谱图A.正离子模式;B.负离子模式下
图6 葛根素核磁共振图谱A.1H-NMR;B. 13C-NMR
H的位置测定值文献值[15]2832882857951798669997022ˊ73917403ˊ68226835ˊ68226836ˊ73917401ˊˊ4829490
表2 13C-NMR测试数据
续表2
由于所制备的样品单元数都小于100,根据随机数表,分别抽取10瓶样品进行均匀性检验。其中葛根素瓶号为42、9、67、89、53、63、32、75、36、60;每瓶样品各称3份,每份1.0 mg按照1.2.2纯度分析方法进行HPLC分析,计算其纯度。采用方差分析法进行检验,对其均匀性做出判断。结果见表3。
表3 根素样品均匀性检验结果
将葛根素样品于4℃冰箱冷藏避光保存,以1年为期,对制备的葛根素样品每3个月取样,按1.2.2纯度分析方法,峰面积归一化法进行纯度计算,每份试样平行测试3次,采用t检验对数据进行分析,稳定性检验结果见表4。
表4 稳定性检验结果
采用直线作为经验模型,观察斜率值是否有显著变化,以此对标准样品的稳定性变化进行预测。斜率可用下式计算:
直线上的点的标准偏差可由下式计算:
式中稳定性测量次数n=3。
取其平方根s=0.276%,与斜率相关的不确定度用下式计算:
自由度为n-2和p=0.95(95%置信水平)的分布t因子等于3.128,由于|b1| 对联合定值的8家实验室所采集的测定结果,采用Grubbs检验法进行检验,未发现异常值。经过数据统计,计算得出葛根素样品的标准值和不确定度。不同实验室检测和方差分析结果见表5、表6。 表5 不同实验室检测结果 表6 不同实验室方差分析结果 总平均值由下式计算: 总平均值的不确定度等于: =7.43×10-5, 式中,实验室内测量次数n=6,实验室数量p=8, 在置信概率为95% 时,k=2,则扩展不确定度UCRM=2uCRM=0.70%。 针对我国尚无葛根素国家实物标准样品的现状,开展了葛根素标准样品的研制工作,成功的建立了葛根素样品的制备方法。并依据GB/T 15000标准样品工作导则,对制备得到的葛根素样品进行均匀性检验、稳定性检验及定值研究,最终申报获批成为国家实物标准样品。 葛根素标准样品的标准值为99.51%,扩展不确定度(95%置信区间)为0.70%。该标准样品符合GB/T 15000标准样品工作导则要求,填补了国内该领域研究的空白。葛根素标准样品不仅可以满足葛根及相关产品分析检测、质量控制工作的需求,同时,也为检测结果的准确性、可比性,以及溯源性提供了技术支撑。 [1]张晓娟,周海纯.葛根化学成分,现代药理及临床应用研究进展[J].中医药信息,2017, 34(1):124-126. [2]张军霞.使用葛根素治疗脑梗死的效果分析[J].当代医药论丛,2017,15(2):143-144. [3]何素珍.葛根素注射液联合丁苯肽治疗脑梗死的临床价值[J].世界临床医学,2017,11(1):94. [4]郭娜,焦黎明,闫冬雪.头针结合天麻葛根颗粒治疗后循环缺血性眩晕的临床疗效观察[J].中西医结合心脑血管病杂志,2016,14(23):2741-2743. [5]赵益,赖小东,叶争荣,等.葛根芩连汤对溃疡性结肠炎模型大鼠抗氧化及抗炎的作用机制 [J].中华中医药杂志,2016, 34(5):1741-1745. [6]王兰,蓝璟,龚频,等.葛根异黄酮降血糖活性及作用机制的研究[J].食品科技,2017(3):223-226. . [7]国医学科学院药物研究所. 葛根的临床应用和实验研究[J]. 医药研究通讯. 1972, (2): 14. [8]Koichi T, Hideji I. Isoflavonoids and the other constituents in callustissues of pueraria lobala[J]. Chemical and Pharmaceutical Bulletin, 1982, 30(4): 1496. [9]钟平华. 葛根素的现代应用概况[J]. 中国食品卫生杂志. 1997, 9(6): 36-37. [10]He X L, Tan T W, Xu B Z et a1. Separation and purification of puerafin using 13-cyclodextrin-coupled agarose gel media[J]. Journal of Chromatography A, 2004, 1022: 77-82. [11]李为厚, 武维恒.葛根素注射液治疗冠心病心绞痛的临床研究[J].华北煤炭医学院学报. 2000, 2(6): 611-612. [12]罗伟, 李保东, 杨瑞华, 等.葛根素治疗高血压病的临床研究[J].中国中医基础医学杂志. 2000, 6(5): 61-63. [13] GB/T15000.3-2008,标准样品工作导则(3)标准样品定值的一般原则和统计方法[S],2008. [14]雷雨,图雅,张艳玲,等.野葛与粉葛的二维红外相关光谱鉴别[J].分析仪器,2010,(3):47-49. [15]Kinji J E, Furusawa J I, Baba J, et al. Studies on the constituents of Pueraria lobata. III Isoflavonoids and related compounds in the roots and the voluble stems[J]. Chemical and Pharmaceutical Bulletin,1987,35: 4846-4850.2.5 定值
3 结论
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