时间:2024-07-28
胡 菲 汤 婷 张 佳 刘燕燕 蒋爱民 蒋 卓
(华南农业大学食品学院,广东 广州 510642)
高压脉冲电场(PEF)是近年来研究最多的非热杀菌技术之一[1],是一种新型的食品绿色加工技术[2],相比热加工方法杀菌,脉冲电场处理能更大限度保持食品的品质、营养和风味[3]。PEF较早用于水果的预处理以达到提高果汁提取率的目的,现在已实现商业规模[4]。近年来,高压脉冲电场在食品杀菌、钝酶、物质提取[5]、酒类催陈[6]、农药残留降解[7]等加工领域的应用十分广泛[8],在经皮给药[9]39-40、基因转染[10]、肿瘤治疗[11]等生物医学效应及其治疗作用上的应用也逐渐被关注。
在食品工业,PEF的研究主要集中于食品杀菌、钝酶、提取、改性等方面[12]。在食品杀菌中,多数学者认为其杀菌是高压脉冲电场对细胞膜的作用,“电穿孔”和“点崩溃”是目前被广泛接受的2种学说[13]。针对PEF钝酶作用,多数学者[12,14]认为,其钝酶的机理为影响酶的结构。Wang等[15]通过研究PEF对辣根过氧化物的影响发现其二级、三级结构均会发生变化;张若兵等[4]对PEF处理后的过氧化酶和果胶甲基酯酶进行圆二色谱和荧光光谱分析,发现其二级结构和三级结构发生了改变。Perez等[16]借助透射电子显微镜观察PEF处理后的蛋白质,发现脉冲电场会引起蛋白质颗粒聚集,导致蛋白质粒径增大,从而提出PEF会诱导蛋白质结构变化,会对食品蛋白质组分的结构与功能产生影响;具体表现为:在PEF处理条件下,蛋白质分子结构中自由电子、离子和其他带电荷离子发生移动和极化,分子偶极距方向的改变增加,引起蛋白质介电常数的改变,而进一步影响到蛋白质分子的二级和三级结构,但不会影响其一级结构。蛋白质分子的展开会使分子内疏水基团和巯基暴露,从而引起蛋白质活性位点的改变和其功能特性的改变。蛋白质分子的展开导致水分子进入其中,使得蛋白质分子间的氢键相互作用增强,形成蛋白质分子聚集[17]。蛋白质分子聚集分为蛋白质聚集(aggregation)和蛋白质自组装(self-assembly) 2种,其中蛋白质自组装会形成蛋白质纳米纤维或生成蛋白质纳米管。
天然存在的蛋白质纳米管,如烟草花病毒,具有特殊的生物学功能[11]。通过蛋白质自组装形成的蛋白质纳米管,其功能和物理性质都有很大提高,是先进功能材料的基础材料,在生物治疗领域,可作为细胞的发动机、泵和模拟自然系统的人造纤维支架,具有很大的应用前景[18]。近年来,不少学者在研究蛋白质纳米管的形成及其机理。刘燕燕等[19] 14 [20]探究了在金属离子存在条件下,经PEF处理,卵清蛋白会形成蛋白质纳米管。Niu[9]39用原子力显微镜观察和分析蛋白质纳米管,并预测蛋白质纳米管可以用来作为药物载体和组织工程。Graveland-Bikker[21]在制备水解的-乳清蛋白纳米管时发现金属离子的存在是乳清蛋白纳米管形成的另一个先决条件。刘燕燕[19]14-19的研究表明,卵清蛋白纳米管的形成与添加的金属离子的价态有关,一价金属离子(Na+)和三价金属离子(Fe3+)对蛋白质纳米管的形成作用不大,二价金属离子中:Ca2+、Ba2+、Mn2+和Cu2+更易形成结构清晰的蛋白质纳米管。为了更清晰地研究二价金属离子对蛋白质纳米管形成的影响机理,在前人研究的基础上,探究其形成机理,以弥补此方面研究的空白;本试验在卵清蛋白溶液里,添加金属离子Ca2+、Ba2+、Mn2+和Cu2+以改变蛋白质溶液的电化学环境,通过测定溶液的氧化还原电位,zeta电位以及电导率的变化寻求脉冲电场和蛋白质纳米管形成之间的规律,探究金属离子和PEF协同对蛋白质电化学性质的影响机制,为脉冲电场的应用及蛋白质的利用提供理论依据。
卵清蛋白:美国Sigma公司;
脉冲电场处理装置:SY-Z-500型,华南理工大学轻工与食品学院自行研制;
旋片真空泵:2XZ-2型,浙江台州求精真空泵有限公司;
冷却装置:DLSB-30000 型,郑州长城科工贸有限公司;
电导率仪:DDS-11A型,上海雷磁·创益仪器仪表有限公司;
zeta电位分析仪:Nano-zs&MPT-2型,上海思百吉仪器系统有限公司。
1.2.1 试验流程
卵清蛋白制备→透析→加金属离子→脱气→脉冲电场处理→测定指标
1.2.2 卵清蛋白处理流程 卵清蛋白相对分子质量为45 000,按照卵清蛋白样品质量(一般以20 g为准)配制0.000 44 mol蛋白质溶液样品,Mn2+、Cu2+、Ca2+、Ba2+与卵清蛋白摩尔比分别为6∶1,4∶1,4∶1,4∶1,搅匀待用。
1.2.3 脉冲电场处理 对加入不同金属离子的卵清蛋白进行单个和多个脉冲处理。处理前,保证样品中没有气泡。处理过程中采用4 ℃的恒温冷却水对处理后的样品进行及时冷却,确保样品通过电场的温度一致。采用电子恒流泵,控制样品的流速为25 mL/min。脉冲波宽度设置为20 μs,电场强度分别设置为14,20 kV/cm,分多次操作。当样品经脉冲电场处理1,2,3,4次时,其对应处理时间分别为565,1 130,1 695,2 230 μs,脉冲频率1 000 Hz,处理前电导率为139 μS/cm。
1.2.4 zeta电位检测 根据文献[22]修改如下:温度设定为25 ℃,由zeta电位分析仪直接测定。
1.2.5 电导率检测 根据文献[23]修改如下:温度设定为20 ℃,启动电导率分析仪,检测3次,取平均值。
1.2.6 氧化还原电位检测 根据文献[24],采用差分脉冲伏安法和三电极的工作方式测定。
由图1可以看出,金属离子的添加均增加了卵清蛋白的zeta电位,不同金属离子和PEF协同处理对卵清蛋白溶液zeta电位的影响不同。
Ba2+协同PEF导致卵清蛋白zeta值呈递减趋势,其原因有可能是卵清蛋白分子与Ba2+形成网络结构的电位绝对值随着脉冲电场输入能量的增大而增大,脉冲电场对蛋白质分子极化程度增加。Cu2+协同PEF处理后的卵清蛋白zeta电位呈现减小趋势。Mn2+和PEF协同处理的卵清蛋白zeta电位呈现先增大后减小趋势,对比未经PEF处理的蛋白样品,脉冲处理时间为565,1 130,1 695 μs时,zeta电位都呈现不同程度的增加,当脉冲处理时间为2 260 μs时,zeta电位下降,说明蛋白质分子可能发生了聚集。Ca2+和PEF协同作用对卵清蛋白zeta电位的影响有相似的规律,呈现先增大后减小的趋势,在脉冲处理时间为1 130 μs时,zeta电位最大,说明蛋白质分子展开程度增加,Ca2+在蛋白质分子间搭桥作用明显,蛋白质分子和Ca2+之间最大程度网络化;随着脉冲处理时间继续增大到1 650,2 260 μs时,zeta电位下降,说明蛋白质分子可能发生聚集。
由图2可以看出,PEF单独作用对蛋白质溶液电导率的影响不大。
由图3可以看出,随着脉冲处理时间的延长,添加了4种金属离子的蛋白质溶液的电导率均呈现先增大后减小的趋势,其中Ca2+离子的添加对蛋白溶液的电导率影响最大。与未添加金属离子的对照组对比,不同金属离子对未经PEF处理的蛋白质溶液电导率有明显差别,说明不同金属离子和蛋白质分子的螯合作用不同。Ca2+的添加对卵清蛋白溶液电导率影响最大,说明Ca2+与蛋白质分子之间形成的网络结构最明显。当脉冲处理时间为565 μs时,添加Ba2+和Ca2+的蛋白质溶液电导率达到最大,当脉冲处理时间为1 650 μs时,添加Cu2+的蛋白质溶液电导率达到最大值。之后随着脉冲时间的延长,电导率都有明显的下降,说明蛋白质分子发生聚集,金属离子分布在蛋白质分子聚集体内,导致蛋白质溶液电导率下降。
图1 PEF协同不同金属离子对蛋白质溶液zeta电位的影响Figure 1 The effect of PEF and different metal ions on the zeta potential of protein solution
场强为20 kV/cm,脉宽20 μs图2 PEF对蛋白质溶液电导率的影响Figure 2 Effect of PEF on conductivity of protein solution
根据上述研究,发现Ca2+对zeta电位和电导率影响较大。为研究场强对溶液电化学性质的影响,选取Ca2+与PEF协同作用,观察不同场强对溶液电导率的影响。试验时,Ca2+浓度不变,改变电场场强及脉冲时间,蛋白质溶液的电导率见图4。未添加Ca2+金属离子未经PEF处理的蛋白质溶液电导率为0.299 mS/cm,添加Ca2+但未经PEF处理的蛋白质溶液电导率有明显差别,呈显著提高,说明Ca2+和蛋白质分子之间存在较强的缔合作用。当脉冲场强为14 kV/cm,添加Ca2+的蛋白质溶液的电导率随着脉冲处理时间的延长呈现减小的趋势,其原因是蛋白质分子有可能发生聚集,Ca2+分布在蛋白质分子聚集体内,导致蛋白质溶液电导率下降。当脉冲场强为20 kV/cm时,添加Ca2+的蛋白质溶液呈现先减小后增大的趋势。二者相比,高场强的脉冲电场处理后,蛋白质溶液的电导率比经过低场强处理的蛋白质溶液高。其原因可能是高场强诱导蛋白质分子正极化,低场强诱导蛋白质分子负极化,高场强诱导蛋白质溶液内游离离子增加。
除上述指标外,还研究了PEF和不同金属离子协同作用对蛋白质溶液氧化还原电位的影响。在卵清蛋白溶液中分别按比例加入确定质量的Ca2+、Ba2+、Cu2+和Mn2+,采用差分脉冲伏安法和三电极的工作方式,利用电化学工作站,生成伏安图像,分析PEF和不同金属离子协同作用对蛋白质溶液氧化还原电位的影响。PEF和不同金属离子协同作用后,蛋白质溶液氧化还原电位见图5~8。
如图5所示,随着处理次数的增加,电流曲线增幅下降,Ca2+样品的电活性下降,且未呈现明显的峰电流。从Ca2+伏安图中也可以看出,控制样品(未添加钙离子且未经过电场处理)的电活性最强,可知经过低场强脉冲电场处理后样品电活性下降,可导电物质能力和数量减少。
场强为20 kV/cm,脉宽20 μs图3 PEF协同不同金属离子对蛋白质溶液电导率的影响Figure 3 Effect of PEF cooperating with different metal ions on conductivity of protein solution
图4 不同场强PEF协同Ca2+对蛋白质溶液电导率的影响
Figure 4 Effects of different field strengths of PEF and Ca2+on the conductivity of protein solution
如图6所示,随着处理次数的增加,电流曲线下降,Ba2+样品的电活性下降,且未呈现明显的峰电流,曲线之间呈现递减规律。从Ba2+伏安图中也可以看出,控制样品(未添加离子且未经过电场处理)的电活性最强,因此也可以断定脉冲电场处理后样品电活性下降,可导电物质能力和数量减少。
如图7所示,蛋白质溶液空白样电流小,Cu2+的添加增加了卵清蛋白溶液的峰电流。随着脉冲电场处理时间的增加,出现峰电流,未添加金属离子的控制样品和添加金属离子后均没有峰电流值。当脉冲处理时间为565,1 130,1 695,2 260 μs,峰电流值分别为1.59E-07(0.78 V),1.69E-07(0.7 V),1.82E-07(0.68 V),1.86E-07(0.66 V)A,呈现递增规律。说明脉冲电场和金属Cu2+协同增加了蛋白质分子的电活性,Cu2+在蛋白质分子间搭桥作用明显,蛋白质分子间相互作用增强,形成了电活性比较稳定的自组装结构。随着脉冲电场输入能量持续增加,脉冲电场对蛋白质分子极化程度增加。
图5 PEF协同Ca2+对氧化还原电位的影响Figure 5 Effect of PEF and Ca2+ on Redox Potential
图6 PEF协同Ba2+对氧化还原电位的影响Figure 6 Effect of PEF and Ba2+ on Redox Potential
图7 PEF协同Cu2+对氧化还原电位的影响Figure 7 Effect of PEF and Cu2+ on Redox Potential
图8 PEF协同Mn2+氧化还原电位的影响Figure 8 Effect of PEF and Mn2+ on Redox Potential
如图8所示,蛋白质溶液空白样电流小,Mn2+的添加增加了卵清蛋白溶液的峰电流。随着脉冲电场处理时间的延长,出现峰电流,未添加金属离子的控制样品峰电流值为9.67E-08 A(0.732 V),添加金属离子后峰电流值为1.24E-06 A(0.824 V)。当脉冲处理时间为565,1 130,1 695,2 260 μs时,峰电流值分别为5.57E-06(0.76 V),6.99E-06(0.74 V),7.53E-06(0.74 V),7.56E-06(0.74 V) A,呈现递增规律。说明脉冲电场和金属Mn2+协同增加了蛋白质分子的电活性,诱导蛋白质分子和金属离子缔合,形成较大颗粒网络结构,蛋白质与蛋白质分子间通过Mn2+相互作用,形成了电活性比较稳定的自组装结构。当脉冲处理时间为1 130 μs时,脉冲电场和金属离子协同作用诱使蛋白质生成粒度较大的纳米材料。
综上,添加Ca2+和Ba2+的蛋白质溶液,随着处理次数的增加电流下降,溶液内可导电物质以及导电能力下降,而添加了Cu2+和Mn2+的蛋白质溶液,均出现峰电流,形成了较稳定的自组装结构。
金属离子的加入都能影响PEF下蛋白质纳米管的形成,卵清蛋白与金属离子间会发生螯合作用,Ca2+协同PEF处理时在蛋白质分子间搭桥作用最明显,分子间呈现最大程度网络化,PEF处理1 130 μs时作用最明显,之后蛋白质分子发生聚集。且在高场强下诱导蛋白质溶液内游离离子增加,蛋白质分子正极化,低场强诱导蛋白质分子负极化。Cu2+协同PEF处理也会使蛋白质分子发生聚集,蛋白质分子间相互作用增强,形成了电活性比较稳定的自组装结构。本试验研究发现脉冲电场对蛋白质与金属离子的螯合有加强作用,可进一步探究脉冲电场在提高高蛋白饮料中矿物质的结合率上的应用,从而提供矿物元素的吸收,为脉冲电场的应用开拓新领域。
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