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不同运动时间对2型糖尿病大鼠骨骼肌IRS-2蛋白含量及磷酸化的影响

时间:2024-07-28

华宏 王耀光 郭仁勇

1辽宁师范大学体育学院(大连 116029) 2辽宁师范大学生命科学学院

胰岛素受体底物-2(insulin receptorsubstrate,IRS-2)是细胞质中的接头蛋白(Adaptor),主要连接胰岛素受体(IR)和多种效应分子,从而介导细胞对胰岛素(INS)等的反应[1]。随着基因剔除技术的发展,发现剔除IRS-2基因的纯合子动物(IRS-2-/-)具有 2型糖尿病(DM)的全部特征[2],因此IRS-2及活动规律成为近来2型DM研究的热点。运动是治疗2型糖尿病的主要非药物手段,运动可提高胰岛素的敏感性和作用效果,由于IRS-2的特殊作用,运动对胰岛素的影响与IRS-2的介导功能相关。有研究发现运动可提高IRS-2蛋白表达和磷酸化程度[3,4],但不同运动时间对 IRS-2含量和磷酸化的影响还不清楚。故本实验通过测定2型糖尿病大鼠进行8周不同运动时间的跑台运动后骨骼肌IRS-2蛋白含量及磷酸化变化,为DM运动疗法提供更科学的理论指导。

1 材料与方法

1.1 动物

70只健康 Sprague-Dawley(SD)大鼠,体重(200±16)g,雌雄不拘,由大连医科大学动物中心提供(许可证号:SCXK(辽)2004-0017)。在标准环境下常规分笼喂养,自由饮水进食。适应性喂养1周后进行适应性训练。随机选择10只大鼠为正常对照组,其余为实验组,制备2型糖尿病大鼠模型。

1.2 实验方法

1.2.1 2型糖尿病大鼠模型制备

参照洪丽莉等的方法制备模型[5]。实验组大鼠进行4周高脂饲料喂养,同时加3%果糖饮水。4周后按30mg/kg体重的剂量一次性腹腔内注射STZ(溶于0.1 mmol/L柠檬酸缓冲液,pH4.4)。注射后1周进行葡萄糖耐量试验。方法为:大鼠禁食4~6小时,经腹腔注射葡萄糖(2g/kg体重),断尾采血测定0、60和120min时的血糖。DM诊断标准为连续2次空腹血糖(FGB)≥7.8mmol/L或葡萄糖负荷后2h血糖≥11.1mmol/L[6]。此方法造模成功率达85%。2周后,大鼠禁食12h后,断尾取血,用罗氏试纸测大鼠空腹血糖(FBG),同时检测空腹胰岛素(FINS)。

高热量饲料配方:100kg大鼠基础饲料中加人全蛋粉6kg(大连生化制品有限公司生产)、蔗糖23kg(广西糖业集团销售有限公司生产)、炼猪油26.5kg(河北石家庄制造),混和成形,烤干成150kg。其总热量为20.083J/g,即4.80CaUg,其中蛋白质占15%,碳水化合物占51%,脂肪占25%。

1.2.2 糖尿病大鼠运动方案

将符合标准的50只糖尿病大鼠随机分为糖尿病对照组和糖尿病运动组(20min组、40min组、60min组和80min组),并继续高脂饲料喂养。各糖尿病运动组运动强度参照 Soya等的实验[7],以20m/min进行8周跑台运动。运动时间分别为每天20min、40min、60min和80min。对照组常规饲养。本实验动物的处置符合国际实验动物伦理学要求。

1.2.3 取材和指标测定

各组大鼠运动后即刻腹腔内注射3%戊巴比妥钠50mg/kg体重)麻醉,取后肢股四头肌肉组织,置于液氮中,待提取蛋白质。

称取骨骼肌100mg,剪碎后置于组织匀浆液600μl 2%SDS,50mmol/L Tris-HCl,pH6.8,10%甘油,1mmol/L Na3VO4,1mmol/L PMSF,5g/L Leupeptin)中,采用 Poly ron PT10-35组织扩散仪制备组织匀浆(7000~10000g)。所得匀浆置于4℃、10000g离心10min,取上清液,采用改良Lowery法测定蛋白浓度[8],以备上样。

1.2.4 IRS-2蛋白表达测定

采用Western blot免疫印迹法。取含等量总蛋白50μg)的样品,经7.5%SDS-PAGE分离,电转膜后以 5%脱脂奶粉封闭,再分别与兔抗人IRS-1和IRS-2多克隆抗体反应,继而与辣根过氧化酶标记的羊抗兔二抗作用,以增强化学发光法(ECL)显示蛋白条带,并用激光光密度扫描仪测定蛋白条带光密度。

1.2.5 IRS-2蛋白磷酸化的测定

采用免疫沉淀及增强化学发光法。取含等量总蛋白500μg)的样品,与抗IRS-2抗体4℃孵育过夜。抗原-抗体复合物经固相化蛋白G沉淀后,重新溶解于Laemmli上样缓冲液,加热到95℃ 5min,经7.5%聚丙烯酰氨凝胶电泳1.5h。抗-磷酸化酪氨酸免疫印迹,醋酸纤维薄膜直接与辣根过氧化物酶结合的一抗APY20H孵育1.5h。充分洗涤后与ECL反应1min,即刻X线片曝光,洗片后用Leica Q550-IW图像分析仪(德国)进行扫描,计算光密度。

以正常对照组的IRS-2蛋白含量和磷酸化为100作为标准,计算其他各组的相对量。

1.2.6 试剂与仪器

IRS-2多克隆抗体够自R&D Systems公司,ECL购自英国Amersham公司。预染蛋白Marker购自New England BioLabs。血糖(FBG)用快速血糖仪检测,仪器及试纸由美国强生公司生产。胰岛素(FINS)用放射免疫法检测,试剂盒由南京生物工程研究所提供,批内CV<3%,批间CV<5%。甘油三酯(TG)试剂盒:北京福瑞生物工程公司生产,批号:040702。总胆固醇(Tc)试剂盒:北京福瑞生物工程公司生产,批号:040702。动物跑台由北京硕林苑科技有限公司生产,型号为SLY-RTML六跑道大鼠跑台。

1.3 统计学分析

采用SPSS11.0软件包对实验数据进行统计处理,以均数±标准差表示,组间显著性差异比较采用单因素方差分析(ONE-WAY ANOVA),多重比较采用LSD法。显著性水平α为0.05。

2 结果

表1显示,与正常对照组相比,糖尿病大鼠体重明显增加(P<0.01),血清甘油三酯和总胆固醇水平也明显升高(P<0.01),同时血糖和胰岛素水平明显升高P<0.01)。

表1 造模成功后两组大鼠体重、血糖、血脂和胰岛素水平

表2显示,与对照组相比,糖尿病对照组股四头肌IRS-2蛋白含量下降41%(P<0.01)。与糖尿病对照组相比,运动20min组、40mmin组、60min组和80min组分别升高 11.7%、12.4%、12.2%和 11.9%(P<0.01)。与 20min组及80min组相比,40min组IRS-2蛋白含量分别升高10.9%和10.7%(P<0.05)。但各组仍未恢复到正常对照组水平。

与对照组相比,糖尿病对照组股四头肌 IRS-2磷酸化水平下降49%(P<0.01)。与糖尿病对照组相比,运动20min组、40mmin组、60min组和 80min组分别升高 11.2%、12.7%、12.2%和 11%(P<0.05和 P<0.01)。与 20min组和80min组比,40min组和60min组分别升高11.3%、11.5%(P<0.01)和 10.9%、11.1%(P<0.05)。但各组仍没有恢复到正常对照组水平。

表2 各组大鼠股四头肌IRS-2蛋白含量及磷酸化比较

3 讨论

根据Soya对运动强度的确定依据,20m/min相当于LT(乳酸阈)强度,LT为有氧代谢向无氧代谢的转折点,相当于4mmol/L血乳酸浓度,当运动强度高于LT时,机体的代谢开始转向无氧代谢。LT已经成为有氧健身锻炼和康复训练的一个强度标准。美国运动医学会(ACSM)和美国糖尿病协会(ADA)运动锻炼方案:运动与糖尿病专业指南[9]也将LT强度列为糖尿病康复锻炼推荐的上限强度。IRS-2主要连接胰岛素受体(IR)和多种效应分子[10]。INS与IR结合后,IR的 β 亚基近膜区酪氨酸(Tyr)自身磷酸化并且与IRS-2结合,IR上激活的酪氨酸蛋白激酶(PTK,IR-TK)催化 IRS-2上多个 Tyr磷酸化,为下游含SH2区的蛋白提供位点,形成信号蛋白复合物,以介导进一步的信号传导[11,12]。Park等的研究发现,运动可提高IRS-2蛋白含量和磷酸化程度[13-15],但这些实验均采用单一固定时间,不同运动时间对IRS-2蛋白含量和磷酸化影响的研究还未见报道。本实验结果显示,8周运动后,与糖尿病对照组相比,运动组大鼠骨骼肌IRS-2蛋白含量显著增加,不同运动时间效果不同,并且IRS-2磷酸化的作用效果也存在差异,以运动40min效果最好。由于此类研究才刚开始,还需进一步探索。

[1]Domimic JW,Julio SG,Heather T,et al.Disruption of IRS-2 causes type 2 diabetes in mice.Nature,1998,391:900-904.

[2]Stefan N,Kovacs P,Stumvoll M,et al.Metabolic effects of the Gly1057Asp polymorphism in IRS-2 and interactions with obesity.Diabetes,2003,52:1544-1550.

[3]Arai T,Hashimoto H,Kawai K,et al.Fulminant type 1 diabetes mellitus observed in insulin receptor substrate 2 deficient mice.Clin Exp Med,2008,8(2):93-99.

[4]Kubota N,Kubota T,Itoh S,et al.Dynamic functional relay between insulin receptor substrate 1 and 2 in hepatic insulin signaling during fasting and feeding.Cell Metab,2008,8(1):49-64.

[5]洪丽莉,许冠荪,申国明,等.SD大鼠2型糖尿病模型的建立. 中国比较医学杂志,2005,15(6):379-381.

[6]郭啸华,刘志红,李恒,等.实验性2型糖尿病大鼠模型的建立.肾脏病与透析肾移植杂志,2000,9(4)351-355.

[7]Soya H,Mukai A,Deocaris CC,et al.Threshold-like pattern of neuronal activation in the hypothalamus during treadmillrunning:establishmentofa minimum running stress(MRS) rat model.Neurosci Res,2007,58(4):341-348.

[8]Lowery OH,Rosebrough HJ,Farr AL,et al.Protein measurementwith thefolinphenolreagent.JBiolChem,1951,193:265-275.

[9]Anomymous.ADA/ACSM:Diabetes mellitus and exercise Joint position paper.Med Sci Sports Exerc,1997,29:1-6.

[10]Lothar V,Wojciech W,Ludger KH,et al.Human insulin receptor substrate-2 gene organization and promoter characterization.Diabetes,1999,48:1877-1880.

[11]Bouzakri K,Zachrisson A,Al-Khalili L,et al.siRNA-based gene silencing revealsspecialized rolesofIRS-1/Akt2 and IRS-2/Akt1 in glucose and lipid metabolism in human skeletal muscle.Cell Metab,2006,4(1):89-96.

[12]Lima MH,SouzaL C,Caperuto LC,et al.Up-regulation of the phosphatidylinositol 3-kinase/protein kinase B pathway in the ovary of rats by chronic treatment with hCG and insulin.J Endocrinol,2006,190(2):451-459.

[13]Park S,Hong SM,Lee JE,et al.Chlorpromazine attenuates pancreatic beta-cell function and mass through IRS2 degradation,while exercise partially reverses the attenuation.J Psychopharmacol,2008,22(5):522-531.

[14]Park S,Hong SM,Sung SR.Exendin-4 and exercise promotes beta-cell function and mass through IRS2 induction in islets of diabetic rats.Life Sci,2008,82(9-10):503-511.

[15]Park S,Hong SM,Lee JE,et al.Exercise improves glucose homeostasis that has been impaired by a high-fat dietby potentiating pancreatic beta-cellfunction and massthrough IRS2 in diabetic rats.JApplPhysiol,2007,103(5):1764-1771.

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