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Treg细胞和Th17细胞在炎症性肠病治疗中的作用*

时间:2024-07-28

蒋学佩 吴小丽 黄智铭

温州医科大学附属第一医院消化内科(325000)

炎症性肠病(inflammatory bowel disease, IBD)是一种发生于胃肠道的慢性非特异性炎症性疾病,包括溃疡性结肠炎(ulcerative colitis, UC)和克罗恩病(Crohn’s disease, CD)。IBD的发病机制尚未完全阐明,目前认为肠道黏膜免疫反应过度和功能紊乱是其发病的主要原因。已证实调节性T细胞(Treg细胞)数量减少或功能异常均会引发IBD,而辅助性T 细胞17(Th17细胞)及其分泌的细胞因子在IBD发病中亦发挥重要作用。本文就Treg细胞和Th17细胞在IBD治疗中的作用作一综述。

一、Treg细胞和Th17细胞

通常所说的Treg细胞即为CD4+CD25+Foxp3+Treg细胞,是维持免疫耐受的专职免疫调节细胞,可通过接触抑制,释放颗粒酶A、穿孔素,分泌抑制性细胞因子白细胞介素(IL)-10、转化生长因子(TGF)-β、IL-35、可溶性纤维蛋白原样蛋白2(sFGL2)等,发挥免疫抑制作用。此外,Treg细胞还可与IL-2结合,导致依赖IL-2的T细胞凋亡[1]。某些Treg细胞亚群可产生高水平的cAMP,抑制效应T细胞发挥其正常功能。Treg细胞分化及其功能受多种因子调控,其中Foxp3是维持Treg细胞免疫抑制功能的特异性转录因子,TGF-β1可调控Foxp3表达并影响Treg细胞功能,维甲酸可与TGF-β1共同上调Foxp3表达并促进Treg细胞分化。

通常所说的Th17细胞即为IL-17+CD4+T细胞,可介导炎症反应,参与炎症性疾病和自身免疫性疾病的发生、发展。然而IL-17单克隆抗体的临床治疗效果不佳,表明并非所有IL-17+Th17细胞均有致病性。Th17细胞对免疫平衡起有调节和保护作用:①分泌IL-17A,增强上皮细胞紧密连接,刺激肠上皮细胞分泌黏蛋白[2];②分泌IL-22,激活STAT3和MAPK通路,促进抗菌肽和β防御素的释放,维持肠道屏障结构和功能完整性;③IL-17+IL-10+Th17细胞具有黏膜保护功能。研究[3]表明Th17细胞在TGF-β1和IL-6诱导下不易引发自身免疫性疾病,而在TGF-β3和IL-6诱导下却具有高度致病性。目前认为致病性Th17细胞还包括 IL-1β+IL-6+IL-23+Th17细胞、IL-17A+IFN-γ+Th17细胞、IL-22+IFN-γ+Th17细胞等[4]。

二、Treg细胞和Th17细胞在IBD发生、发展中的作用

1. Treg细胞在IBD发生、发展中的作用:研究表明IBD发生与Treg细胞减少或功能异常有关,效应T细胞因缺乏Treg细胞的免疫抑制调控作用,可引发肠道过度免疫反应,最终导致肠黏膜损伤。TGF-β、IL-2、IL-2R、IL-10等基因敲除小鼠可因Treg细胞减少而引起自发性结肠炎,其肠道表现出隐窝破坏、隐窝脓肿、黏膜下炎症细胞浸润等特征。条件性敲除小鼠CD4+T细胞上的TGF-β后,Treg细胞功能减弱,并引发严重的肠道炎症。临床研究[5]表明IBD患者外周血中的CD4+CD25+Treg细胞数量和Foxp3表达均明显少于正常人,而肠系膜淋巴结和结肠固有层中CD4+CD25+Treg细胞浸润;IBD患者外周血中抑制性细胞因子(如IL-10、sFGL2等)表达水平升高,并在炎症缓解期逐渐恢复到正常水平,这可能是由Treg细胞被招募至炎症部位发挥免疫调控作用所致。

结肠中Treg细胞高度依赖肠道菌群存在,在无菌小鼠或清除肠道菌群的小鼠体内,Treg细胞显著减少;当以SPF级小鼠的排泄物喂养无菌小鼠时,后者结肠内Treg细胞明显增多[6]。研究表明梭状芽孢杆菌对Treg细胞的免疫活性发挥重要作用,高剂量梭状芽孢杆菌能显著激活Treg细胞,并对葡聚糖硫酸钠(DSS)诱导的实验性结肠炎具有保护作用。IBD患者肠道内梭状杆菌(尤其是普拉梭菌)数量以及外周血和肠道固有层中CD4+CD8+Treg细胞数量显著减少[7]。另外有文献[8]报道肠道微生物的代谢产物(如短链脂肪酸)可通过增加Treg细胞数量以及上调IL-10表达来缓解小鼠肠道炎症症状。

综上所述,Treg细胞及其分泌的抑制性细胞因子与IBD发生、发展密切相关,在维持肠道免疫平衡中起有重要作用。Treg细胞免疫抑制活性失调是IBD肠道黏膜损伤的主要原因。

2. Th17细胞在IBD发生、发展中的作用:活动性IBD患者肠道内Th17细胞及其相关细胞因子(IL-17A、IL-17F、IL-22、IL-26)和趋化因子(CCL20、IL-23R等)水平显著高于健康人群。研究[9]发现IBD患者(尤其是对糖皮质激素治疗耐受的IBD患者)肠道黏膜中IFN-γ+IL-17+CD4+T细胞增多,这类细胞被认为是具有致病性的Th17细胞。

三硝基苯磺酸(TNBS)诱导的IL-17A受体基因敲除小鼠结肠炎症状明显轻于正常小鼠,而通过阻断IL-17信号通路可缓解TNBS诱导的普通小鼠结肠炎症状。此外,对免疫缺陷小鼠注射初始CD4+T细胞和外源性IL-23,可导致小鼠发生更严重的结肠炎,并引起肠道IL-6、IL-17水平明显增加[10]。

IBD发生与肠道菌群失调关系密切。受肠道病原微生物感染的上皮细胞凋亡后可提供Toll样受体(TLR)配基和磷脂酰丝氨酸,激活树突细胞产生IL-6和TGF-β,从而促进Th17细胞增殖、分化并引起炎症因子失调和慢性炎症,最终导致肠道组织损伤并发生IBD[2,11]。

综上所述,Th17细胞及其分泌的细胞因子在肠道炎症发生中发挥重要作用,有望成为IBD治疗的新靶点。

三、Treg细胞与Th17细胞之间的平衡及其影响因素

Treg细胞和Th17细胞可在多种因素调控下相互转化,IL-6是决定初始CD4+T细胞分化为Treg细胞还是Th17细胞的关键因子。TGF-β单独存在时,可通过促进Foxp3表达,诱导初始CD4+T细胞分化为Treg细胞;而TGF-β和IL-6共同存在时则诱导初始CD4+T细胞分化为Th17细胞。维甲酸可在TGF-β调控下通过SMAD3通路诱导Foxp3表达并促进Treg细胞分化,亦可通过抑制IL-6和IL-23R表达,引起Th17细胞减少[12]。STAT3在Treg细胞和Th17细胞分化及其相互转化中扮演重要角色。T细胞中STAT3缺失可抑制Th17细胞的转录因子RORγt和RORα表达,导致T细胞中T-bet和Foxp3表达增加,使Th17细胞分化受阻;STAT3功能亢进时RORγt和RORα表达增加,引起Foxp3表达减少,促使CD4+T细胞分化为Th17细胞[13]。缺氧诱导因子(HIF)-1可诱导Foxp3发生泛素化或蛋白酶体降解,从而抑制Treg细胞分化;同时HIF-1可通过STAT3信号通路发挥对Th17细胞的正调控作用,并在IL-17A和IL-17F激活下维持Th17细胞的免疫应答[14]。研究[15-16]证实IL-15可通过激活STAT5信号通路来上调Foxp3表达,维持Treg细胞稳态;IL-15亦能负调控Th17细胞分化,抑制IL-17分泌,该过程与Th17转录因子Runx1和RORγt表达升高有关。研究[17]报道上皮细胞来源的IL-18通过抑制MyD88依赖的下游信号IL-1R,减少Th17细胞分化,而IL-18对Treg细胞分化无影响,并有助于维持Treg细胞功能,对抵抗肠道炎症起有重要作用。

四、调节Treg细胞和Th17细胞免疫应答在IBD治疗中的应用

Treg细胞可抑制效应T细胞的过度免疫应答,保护肠道组织免受损伤;Th17细胞主要位于肠道黏膜表面,保护宿主免受病原微生物入侵。两者相互制约,处于动态平衡,共同调节肠道免疫稳态。对Treg细胞和Th17细胞免疫应答的调控有望成为IBD治疗的新策略。

1. Treg细胞与IBD治疗:动物实验[18]表明当对免疫缺陷小鼠注射不含CD4+CD25+Treg细胞的效应T细胞后,小鼠肠道免疫反应过度激活,并发生严重的慢性结肠炎;当重新注射CD4+CD25+Treg细胞后,小鼠结肠炎症状得到缓解。Canavan等[19]发现从CD患者外周血中分离出的CD4+CD25+CD127loCD45RA+Treg细胞可在体外扩增并稳定表达Foxp3,且不具有分化为Th17细胞的潜能,同时可抑制来源于CD患者肠道固有层和肠系膜淋巴结的淋巴细胞功能,因此这类细胞有望成为自体Treg细胞移植治疗IBD的新手段,但具体疗效有待进一步研究证实。Desreumaux等[20]收集自体抗原特异性Treg细胞,经体外纯化后输入难治性CD患者体内,发现患者表现出较好的耐受性以及一定的量效关系。

IL-10主要由Treg细胞分泌并发挥抗炎作用。IL-10敲除和IL-10受体敲除小鼠可自发诱导结肠炎,且以可产生IL-10的肠道细菌喂养IL-10敲除小鼠后,小鼠肠道炎症有所缓解。此外,对结肠炎小鼠注射IL-10重组蛋白或过表达IL-10的T细胞,可缓解T细胞诱导的肠道炎症。Fedorak等[21]利用人重组IL-10来治疗轻-中度CD患者,结果显示低剂量重组IL-10蛋白能改善部分患者的临床症状和内镜下表现,具有较好的耐受性,且观察期间患者无明显不良反应发生。

2. Th17细胞与IBD治疗:Th17细胞及其相关效应分子在IBD发生中起有重要作用,针对这些效应分子和Th17细胞分化所需因子的中和抗体和重组抗体是IBD治疗的新方案。

IL-17是Th17细胞发挥炎症作用的主要效应分子,在不同结肠炎动物模型中针对IL-17的中和抗体和小分子抑制剂可表现出不同的治疗效果。相关临床试验[22]表明,IL-17A中和抗体苏金单抗(secukinumab)、IL-17A受体的中和抗体brodalumab对CD患者的疗效并不理想,且部分患者发生不良反应,这可能与肠道IL-17A作用较为复杂有关。然而,这些抗体在其他自身免疫性疾病(如银屑病)中具有较好疗效,这可能与IL-17A在不同脏器中的反应差异有关。Vidofludimus是一种新型口服免疫抑制剂,可通过抑制STAT3和NF-κB来下调IL-17A和IL-17F水平,在激素依赖的IBD患者中表现出较好的疗效、安全性和耐受性[23-24]。研究表明IBD的不同临床阶段IL-17A表达差异显著,急性期表达远高于慢性期,提示在IBD急性期采取IL-17A抗体治疗效果可能优于全病程治疗[22]。

IL-22是Th17细胞分泌的细胞因子之一,能通过激活肠上皮细胞的STAT3通路,促进上皮细胞增殖、分化并维持黏膜正常功能。研究[25]发现予结肠炎小鼠重组蛋白IL-22后,肠道炎症症状有所缓解,但目前尚无关于IL-22临床应用的报道。

IL-6和TGF-β共同启动Th17细胞的分化,而TNF-α可促进其分化。目前IL-6和TNF-α的重组单克隆抗体已在临床广泛应用。在动物模型中,重组抗IL-6抗体可通过抑制炎症因子释放、减少炎症细胞聚集以及促进T细胞凋亡,缓解结肠炎症症状。

PF-04236921是人源IL-6的单克隆抗体,一项纳入247例IBD的临床研究[26]显示服用该药的治疗组临床应答率和缓解率均优于安慰剂组,并呈一定的量效关系。抗TNF-α制剂主要通过降低炎症因子(包括Th17细胞相关的IL-17、IL-23、IL-6等)表达、增加Treg细胞数量、促进效应T细胞凋亡等途径,上调Treg细胞与效应T细胞的比值。英夫利西单抗(infliximab)与TNF-α特异性结合后可阻断后者与细胞表面受体结合,从而抑制炎症反应,快速诱导肠道黏膜T细胞凋亡,但该药仅对部分患者有效,可能与IBD分型以及多种炎症细胞因子有关[27]。

Th17细胞可通过自分泌IL-21,激活相关信号通路,促使T 细胞向Th17细胞分化。Fina等[28]证实IL-21受体阻断剂可缓解DSS诱导的小鼠结肠炎,而IL-21中和抗体可减少IBD患者固有层T细胞IL-17的分泌,提示针对IL-21的靶向治疗有望成为IBD治疗的新手段。

IL-23可上调其受体分子表达,促进IL-17A、IL-17F和IL-22产生,并在Th17细胞分化后期维持其表型稳定。IL-23是IL-12家族成员之一,包含p40和p19两个亚基,并与IL-12共用p40亚基。Briakinumab是重组IL-12p40的人源化IgG1γ单克隆抗体,一项纳入246例中-重度CD的临床试验[29]表明briakinumab治疗组患者诱导期和维持期的缓解率和应答率均远高于安慰剂组。优特克单抗(ustekinumab)是IL-12/IL-23 p40亚基的单克隆抗体,研究[30]表明其对中-重度活动性CD患者疗效显著,且在英夫利西单抗治疗后使用疗效更佳。此外,一项临床Ⅱ期试验表明,优特克单抗对TNF-α耐受的CD患者疗效较好,为难治性CD患者的治疗提供了新思路[31]。目前针对IL-23p19抗体的早期临床研究已开展,一项临床Ⅱ期试验显示其对包括CD在内的多种自身免疫性疾病均具有较好疗效[32]。

五、结语

Treg细胞和Th17细胞在维持肠道免疫稳态中发挥重要作用,调控两者平衡是治疗IBD的主要策略之一。然而Treg细胞、Th17细胞及其分泌的细胞因子受宿主和环境因素影响,可在不同条件下发挥多种效应。随着对Treg细胞和Th17细胞生物学功能及其作用机制研究的深入,将为IBD治疗提供新思路。

1 Mayne CG, Williams CB. Induced and natural regulatory T cells in the development of inflammatory bowel disease[J]. Inflamm Bowel Dis, 2013, 19 (8): 1772-1788.

2 Gálvez J. Role of Th17 Cells in the Pathogenesis of Human IBD[J]. ISRN Inflamm, 2014, 2014: 928461.

3 Lee Y, Awasthi A, Yosef N, et al. Induction and molecular signature of pathogenic TH17 cells[J]. Nat Immunol, 2012, 13 (10): 991-999.

4 Li J, Doty AL, Tang Y, et al. Enrichment of IL-17A+IFN-γ+and IL-22+IFN-γ+T cell subsets is associated with reduction of NKp44+ ILC3s in the terminal ileum of Crohn’s disease patients[J]. Clin Exp Immunol, 2017, 190 (1): 143-153.

5 Dong X, Ye X, Chen X, et al. Intestinal and peripheral fibrinogen-like protein 2 expression in inflammatory bowel disease[J]. Dig Dis Sci, 2014, 59 (4): 769-777.

6 Shale M, Schiering C, Powrie F. CD4(+) T-cell subsets in intestinal inflammation[J]. Immunol Rev, 2013, 252 (1): 164-182.

7 Sarrabayrouse G, Bossard C, Chauvin JM, et al. CD4CD8αα lymphocytes, a novel human regulatory T cell subset induced by colonic bacteria and deficient in patients with inflammatory bowel disease[J]. PLoS Biol, 2014, 12 (4): e1001833.

8 Smith PM, Howitt MR, Panikov N, et al. The microbial metabolites, short-chain fatty acids, regulate colonic Treg cell homeostasis[J]. Science, 2013, 341 (6145): 569-573.

9 Ramesh R, Kozhaya L, McKevitt K, et al. Pro-inflammatory human Th17 cells selectively express P-glycoprotein and are refractory to glucocorticoids[J]. J Exp Med, 2014, 211 (1): 89-104.

10Sarra M, Pallone F, Macdonald TT, et al. IL-23/IL-17 axis in IBD[J]. Inflamm Bowel Dis, 2010, 16 (10): 1808-1813.

11Owaga E, Hsieh RH, Mugendi B, et al. Th17 Cells as Potential Probiotic Therapeutic Targets in Inflammatory Bowel Diseases[J]. Int J Mol Sci, 2015, 16 (9): 20841-20858.

12Hall JA, Grainger JR, Spencer SP, et al. The role of retinoic acid in tolerance and immunity[J]. Immunity, 2011, 35 (1): 13-22.

13Huang G, Wang Y, Chi H. Regulation of TH17 cell differentiation by innate immune signals[J]. Cell Mol Immunol, 2012, 9 (4): 287-295.

14Dang EV, Barbi J, Yang HY, et al. Control of T(H)17/T(reg) balance by hypoxia-inducible factor 1[J]. Cell, 2011, 146 (5): 772-784.

15Tosiek MJ, Fiette L, El Daker S, et al. IL-15-dependent balance between Foxp3 and RORγt expression impacts inflammatory bowel disease[J]. Nat Commun, 2016, 7: 10888.

16Pandiyan P, Yang XP, Saravanamuthu SS, et al. The role of IL-15 in activating STAT5 and fine-tuning IL-17A production in CD4 T lymphocytes[J]. J Immunol, 2012, 189 (9): 4237-4246.

17Harrison OJ, Srinivasan N, Pott J, et al. Epithelial-derived IL-18 regulates Th17 cell differentiation and Foxp3+Treg cell function in the intestine[J]. Mucosal Immunol, 2015, 8 (6): 1226-1236.

18Mottet C, Uhlig HH, Powrie F. Cutting edge: cure of colitis by CD4+ CD25+ regulatory T cells[J]. J Immunol, 2003, 170 (8): 3939-3943.

19Canavan JB, Scottà C, Vossenkämper A, et al. Developinginvitroexpanded CD45RA+ regulatory T cells as an adoptive cell therapy for Crohn’s disease[J]. Gut, 2016, 65 (4): 584-594.

20Desreumaux P, Foussat A, Allez M, et al. Safety and efficacy of antigen-specific regulatory T-cell therapy for patients with refractory Crohn’s disease[J]. Gastroenterology, 2012, 143 (5): 1207-1217. e1-e2.

21Fedorak RN, Gangl A, Elson CO, et al. Recombinant human interleukin 10 in the treatment of patients with mild to moderately active Crohn’s disease. The Interleukin 10 Inflammatory Bowel Disease Cooperative Study Group[J]. Gastroenterology, 2000, 119 (6): 1473-1482.

22Fitzpatrick LR. Inhibition of IL-17 as a pharmacological approach for IBD[J]. Int Rev Immunol, 2013, 32 (5-6): 544-555.

23Fitzpatrick LR, Small JS, Doblhofer R, et al. Vidofludimus inhibits colonic interleukin-17 and improves hapten-induced colitis in rats by a unique dual mode of action[J]. J Pharmacol Exp Ther, 2012, 342 (3): 850-860.

24Herrlinger KR, Diculescu M, Fellermann K, et al. Efficacy, safety and tolerability of vidofludimus in patients with inflammatory bowel disease: the ENTRANCE study[J]. J Crohns Colitis, 2013, 7 (8): 636-643.

25Lindemans CA, Calafiore M, Mertelsmann AM, et al. Interleukin-22 promotes intestinal-stem-cell-mediated epithelial regeneration[J]. Nature, 2015, 528 (7583): 560-564.

26Danese S, Vermeire S, Hellstern P, et al. 764 Results of Andante, a Randomized Clinical Study With an Anti-IL6 Antibody (PF-04236921) in Subjects With Crohn’s Disease Who Are Anti-TNF Inadequate Responders[J]. Gastroenterology, 2016, 150 (4): S155.

27Kim DH, Cheon JH. Pathogenesis of Inflammatory Bowel Disease and Recent Advances in Biologic Therapies[J]. Immune Netw, 2017, 17 (1): 25-40.

28Fina D, Sarra M, Fantini MC, et al. Regulation of gut inflammation and th17 cell response by interleukin-21[J]. Gastroenterology, 2008, 134 (4): 1038-1048.

29Panaccione R, Sandborn WJ, Gordon GL, et al. Briakinumab for treatment of Crohn’s disease: results of a randomized trial[J]. Inflamm Bowel Dis, 2015, 21 (6): 1329-1340.

30Feagan BG, Sandborn WJ, Gasink C, et al; UNITI-IM-UNITI Study Group. Ustekinumab as Induction and Maintenance Therapy for Crohn’s Disease[J]. N Engl J Med, 2016, 375 (20): 1946-1960.

31Yang J, Sundrud MS, Skepner J, et al. Targeting Th17 cells in autoimmune diseases[J]. Trends Pharmacol Sci, 2014, 35 (10): 493-500.

32Gaffen SL, Jain R, Garg AV, et al. The IL-23-IL-17 immune axis: from mechanisms to therapeutic testing[J]. Nat Rev Immunol, 2014, 14 (9): 585-600.

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