时间:2024-07-28
郑德义 王毅 杜娇 李平洋 肖向阳 程代薇 李自力
(贵州省人民医院烧伤整形科,贵州 贵阳550002)
肠 缺 血 再 灌 注 (intestinal ischemia/reperfusion,II/R)损伤常继发于严重创(烧)伤、休克及危重病患者。II/R促进肠道细菌和内毒素移位,氧自由基损伤、过度或失控的炎性细胞因子和炎性介质的合成及释放,不仅引起肠损伤,而且导致远隔器官如肝、肺及肾脏等多器官损害[1]。失控性炎症反应在II/R损伤病理过程中起重要作用,但其发病的分子机理尚未完全阐明。核因子-κB(nuclear factorκB,NF-κB)主要调控炎性细胞因子基因的转录,NF-κB的活化在急性肝、肺损伤的发生发展中起重要作用[2-3]。内毒素血症、TNF-α、IL-1、缺血/ 再灌注、活性氧等因素都能活化 NF-κB,但是,II/R后全身各重要脏器NF-κB的活化情况目前尚不完全清楚。本研究旨在探讨C57BL/6小鼠在II/R后多脏器损害中NF-κB的活化规律及其可能作用。
1.1 动物分组 10周龄健康雄性C57BL/6小鼠,体质量22~26g,动物随机分为假手术组(S)、缺血再灌注组(II/R)。II/R组按缺血后不同再灌注时间又分为再灌注即刻(0)、0.5h、1h、4h、6h和12h组,每组6只。实验过程符合动物伦理学要求并得到医院伦理学委员会批准。
1.2 模型制备及标本的采集 参照以前实验方法[4],术前禁食12h,自由饮水,腹腔注入1%戊巴比妥钠(50mg·kg-1)麻醉,仰卧固定、常规0.5%碘伏消毒,经腹壁中线切口入腹腔。外置肠攀温盐水纱布覆盖,暴露左侧腹腔,钝性分离并用无创动脉夹夹闭肠系膜前动脉,假手术组不夹闭,暂时关闭腹腔,皮下注入生理盐水1mL,缺血40min松开动脉夹,肠道血供恢复,缝线关闭腹腔,自由饮水。肠缺血恢复再灌注后相应时间点经麻醉处死小鼠,立即取小肠、肝及肺组织于冰盐水中漂洗,置-80℃深低温冰柜保存。II/R6h,分别取距回盲部5cm回肠、右上肺叶、肝及肾脏组织于10%多聚甲醛固定,待病理学检测。
1.3 病理学检查 回肠、肺、肝脏及肾脏组织常规病理切片,HE染色,光学显微镜下观察组织病理变化。
1.4 EMSA检测肠、肝、肺和肾脏NF-κB活化 组织核蛋白提取EMSA检测方法参照文献[5],BCA法定量蛋白浓度后,置-80℃保存。探针采用NF-κB一致性的双链寡核苷酸序列(5’AGTTGAGGGGACTTTCCCAGGC3’)(Santa Cruz Bio-technology),5’端以γ-32P ATP(Amersham Biosciences)标记。5μg细胞核提取物与32P标记的 NF-κB双链寡核苷酸探针进行结合反应,室温下与poly-(dI:dC)结合缓冲液孵育20min;配制6%非变性聚丙烯酰胺凝胶,90V电压电泳后1.5h取出凝胶板、干胶处理,凝胶经保鲜膜覆盖并放入装有X线片的暗盒中,在-70℃放射自显影24h,然后显影、定影。对X线片上电泳带进行密度扫描,NF-κB活性以面积×密度表示。用quantity one图像分析软件处理得出光密度值,与假手术组密度值的比值计算其相对表达量。
2.1 肠、肺、肝脏及肾脏组织病理学改变 假手术组(S组)肠、肺、肝脏及肾脏组织形态正常。II/R后6h肠、肺、肝脏及肾脏发生病理改变,主要表现为回肠黏膜层糜烂、溃疡形成,黏膜下层水肿或变性、坏死,黏膜层、黏膜下层炎性细胞浸润;肺组织充血、水肿,肺间质炎性细胞浸润;肝细胞水样变性、气球样变性,部分有炎性细胞浸润;肾小管上皮细胞水肿。见图1。
图1 II/R后肠、肺、肝和肾脏组织病理学变化(HE×100)
2.2 肠、肝和肺 NF-κB活化情况 II/R引起肠、肝及肾脏组织NF-κB活化。与假手术组比较,缺血再灌注肠组织NF-κB持续活化,尤以再灌注4h、6h升高明显(P<0.01);在肝脏组织,NF-κB活化表现呈升高—降低—再升高双峰型特点,缺血再灌注0.5h、6h和12hNF-κB活化明显(P<0.01);在肺组织,肠缺血期NF-κB即活化,再灌注1h、4h及12hNF-κB活化明显(P<0.01),表现呈升高—降低—再升高重复活化特点。见图2。
图2 II/R后肠、肝和肺组织NFκB活性变化
II/R损伤、肠黏膜屏障受损引起的肠源性感染,诱发全身炎性反应,导致肺、肝、肾脏等远隔脏器的损害,是ARDS和 MODS发生的重要原因[6-7]。研究证实,II/R早期,不仅导致肠损伤,而且引起远隔器官肝、肺及肾脏等多脏器损害。目前认为,肠损伤后肠黏膜屏障受损及功能下降促使肠道细菌及内毒素移位、中性粒细胞活化、氧自由基和各种炎性细胞因子的过度合成及释放、炎症反应在II/R损伤病理过程中有重要作用。
NF-κB是调控炎症反应的中枢环节,目前已知NF-κB/Rel家族成员有 Rel A (p65 )、Rel B、CRel、p105/p50 (NF-кB1)、p100/p52 (NF-кB2)。静息状态下,NF-κB多以p50/p65异二聚体状态与抑制蛋白IκB相结合而存在于细胞质中,当细胞受到炎性细胞因子、氧化剂、细菌内毒素等多种胞内外信号的刺激[8-9],细胞质内 NF-κB 结合的IκB 磷酸化、泛化,进而降解并暴露出NF-κB的核定位序列,NF-κB由此转入核内与DNA分子上的κB单元结合,发挥其转录调节功能[10],从而调控多种炎性细胞因子、黏附分子、趋化因子和生长因子的表达,在机体的免疫应答、炎症反应及细胞增殖和凋亡等方面发挥重要的作用。所以,明确II/R后肠道本身及如肺、肝等远隔器官NF-κB活化规律有重要意义。
本研究结果表明,II/R早期,肠组织 NF-κB活化,肠缺血恢复血流灌注0.5h,肝脏NF-κB达活化高峰,6~12h再次形成活化高峰;在肺组织,肠缺血期 NF-κB活化,再灌注1~4h和12hNF-κB再度明显活化,表现呈升高—降低—再升高重复活化特点。可以认为,肠缺血损伤产生细菌内毒素脂多糖、氧自由基等多种胞内外信号的刺激因素[9],随血液再灌注进入全身各器官组织,导致肝、肺等器官组织NF-κB活化并与κB序列的DNA结合,启动基因的转录和表达,产生大量炎性细胞因子,参与II/R肝、肺及肾脏等多脏器损害。组织损伤、大量炎性细胞因子如TNF-α、IL-1等以正反馈调节机制刺激NF-κB,进一步激活 NF-кB信号系统,从而形成正反馈的级联放大效应,加剧炎症反应,NF-κB活化成为炎症调控的枢纽和关键。因此,缺血再灌注早期,在产生炎症细胞因子的上游水平抑制或阻断NF-κB的激活通路,可能成为减轻II/R损伤的治疗靶点,值得进一步研究。
[1] Harward TR,Brooks DL,Flynn TC,et al.Multiple organ dysfunction after mesenteric artery revascularization[J].J Vasc Surg,1993,18:459-467;discussion 467-469.
[2] Liu G,Park YJ,Tsuruta Y,et al.p53Attenuates lipopolysaccharide-induced NF-κB activation and acute lung injury[J].J Immunol,2009,182:5063-5071.
[3] 尹会男,柴家科,姚咏明,等.NF-κB在烧伤脓毒症大鼠肝损伤中的作用[J].解放军医学杂志,2004,29(1):36-38.
[4] 郑德义,王建明,贾一韬,等.p38丝裂原活化蛋白激酶在小鼠肠缺血再灌注肺损伤中的作用[J].第二军医大学学报,2010,31(3):254-257.
[5] Jia YT,Wei W,Ma B,et al.Activation of p38 MAPK by reactive oxygen species is essential in a rat model of stress-induced gastric mucosal injury [J].J Immunol,2007,179(11):7808-7819.
[6] Takayama M,Ishibashi M,Ishii H,et al.Effects of neutrophil elastase inhibitor(ONO-5046)on lung injury after intestinal ischemia-reperfusion [J].J Appl Physiol,2001,91(4):1800-1807.
[7] Yao Y,Yu Y,Wu Y,et al.The role of gut as a cytokine-generating organ in remote organ dysfunction after intestinal ischemia and reperfusion [J].Chin Med J,1998,111(6):514-518.
[8] Bidere N,Ngo VN.Casein kinase 1alpha governs antigen-receptor induced NF-kappa B activation and human lymphoma cell survival[J].Nature,2009,458:92-96.
[9] Bezbradica JS,Medzhitov R.Integration of cytokine and heterologous receptor signaling pathways[J].Nat Immunol,2009,10(4):333-339.
[10] Huang B,Yang XD,Lang A,et al.Posttranslational modifications of NF-κB:another layer of regulation for NF-κB signaling pathway[J].Cell Signal,2010,22(9):1282-1290.
我们致力于保护作者版权,注重分享,被刊用文章因无法核实真实出处,未能及时与作者取得联系,或有版权异议的,请联系管理员,我们会立即处理! 部分文章是来自各大过期杂志,内容仅供学习参考,不准确地方联系删除处理!