时间:2024-07-29
非酒精性脂肪性肝病(NAFLD)是指除乙醇因素外,以肝脏细胞脂质变性为特征的临床综合征[1]。随着人们生活水平的提高及不良饮食习惯盛行,NAFLD的发病率逐年升高,且有年轻化趋势[2]。NAFLD发病较为隐匿,疾病早期时肝功能无明显异常,但随疾病进展可发展为肝纤维化、肝硬化及肝细胞癌等,严重影响患者的生活质量[3]。目前针对NAFLD的治疗方法主要包括增加运动量、控制饮食等,可在疾病早期改善患者症状,抑制病情进展,但对于上述方法难以改善的患者,必须接受药物治疗,然而目前尚未证实有何种药物对NAFLD是有益的[4]。有研究发现Toll样受体4(TLR4)在NAFLD中高表达,可促进NAFLD进展,抑制其表达可降低NAFLD损伤[5-6]。孙园园等[7]研究发现,miR-30b-5p可通过调节TLR4表达而调控葡萄膜炎的发展。本研究对miR-30b-5p可否通过调控TLR4而改善NAFLD损伤进行探讨,以期为NAFLD的防治提供帮助。
研究选取46只雄性SPF级SD大鼠,均购自北京华阜康生物科技股份有限公司,动物许可证号:SCXK(京)2009-0004。在(23±2)℃和60%湿度环境下适应性饲养1周,明暗交替周期为12 h,期间给予水和普通饲料喂养。
普通饲料及高脂饲料购自北京奥博星生物技术有限公司,BCA蛋白定量测定试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司,HE染色试剂盒购自北京索莱宝科技有限公司,兔多克隆抗TLR4抗体购自英国EterLife公司,1658001型垂直电泳槽和CFX Connect型PCR反应扩增仪由美国Bio-Rad公司生产,DYCP-31C型琼脂糖水平电泳仪由北京六一生物科技有限公司生产。引物序列由德国Qiagen公司设计合成,见表1。
表1 引物序列
1.3.1 模型构建 随机选取36只大鼠,给予高脂饲料喂养,自由饮水、摄食,饲养12周。12周后,随机选取6只大鼠,处死并取其肝脏组织行HE染色,判断NAFLD造模是否成功。将剩余30只大鼠随机分为3组:模型组、空载体组、沉默组,每组10只。模型组大鼠不做任何处理,空载体组大鼠尾静脉注射腺病毒载体,沉默组大鼠尾静脉注射si-miR-30b-5p腺病毒载体。采用RT-qPCR法检测肝脏组织中miR-30b-5p水平,评价沉默miR-30b-5p成功与否。另外10只大鼠(正常组)给予普通饲料饲养,自由饮水、摄食,饲养16周[8-9]。
1.3.2 血脂及肝功能指标检测 各组大鼠饲养16周后,处死并取其肝脏组织称重,计算肝脏指数(肝脏指数=肝脏质量/体质量)。取部分肝脏组织于组织研磨机中研磨,将研磨液于3 500 r/min离心机中离心15 min,提取上层清液。用7020型全自动生化分析仪(日本日立公司)检测各组大鼠肝脏中丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)、三酰甘油(TG)及总胆固醇(TC)水平,试剂盒均购自上海碧云天生物技术有限公司。
1.3.3 HE染色观察肝脏组织病理学变化 取大鼠肝脏组织,用4%多聚甲醛固定,随后石蜡包埋、切片。切片后脱蜡、水化,然后采用HE染色观察肝脏组织病理学变化[10]。
1.3.4 RT-qPCR法检测肝脏组织中miR-30b-5p、TLR4 mRNA的表达水平 取肝脏组织,无菌环境中研磨,将研磨液于4 000 r/min离心机中离心15 min,提取上层清液。取上层清液置于总RNA提取试剂盒(美国Beyotime公司)中提取总RNA,并用722型紫外分光光度计(上海光学仪器五厂有限公司)检测其纯度。取2 μg总RNA于反转录试剂盒(美国Beyotime公司)中进行反转录反应。将反转录产物在PCR扩增仪中进行扩增,反应条件为94 ℃ 10 min预变性;95 ℃ 30 s、60 ℃ 20 s、72 ℃ 20 s,循环40 次。以β-actin为内参,采用2-ΔΔCt表示目的基因的相对表达量[11]。
1.3.5 Western blot法检测肝脏组织中TLR4蛋白的水平 取各组肝脏组织,加入RIPA裂解液提取总蛋白并进行定量,用10% SDS-PAGE分离胶电泳(120 V)至溴酚蓝跑出胶面,转膜缓冲液平衡(5 min/次,共3次),转膜(300 mA 60 min),用5%脱脂牛奶封闭1 h。PBS溶液洗膜(5 min/次,共3次),滴加一抗(1∶1000),4 ℃孵育过夜;PBST溶液洗膜(10 min/次,共3次),滴加二抗(1∶5000),室温下孵育1 h。PBST溶液洗膜(10 min/次,共3次),用ELC发光液曝光显影,用ImageJ软件分析实验结果[12]。
各组肝脏湿重、肝脏指数比较,差异均有统计学意义(P<0.05)。与对照组相比较,模型组、空载体组及沉默组的肝脏湿重、肝脏指数均升高,差异有统计学意义(P<0.05)。与模型组和空载体组相比较,沉默组的肝脏湿重、肝脏指数均降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见表2。
表2 各组肝脏湿重、肝脏指数比较()
注:与对照组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与空载体组比较,cP<0.05
各组TC、TG、ALT、AST水平比较,差异均有统计学意义(P均<0.05)。与对照组相比较,模型组、空载体组及沉默组的TC、TG、ALT、AST表达水平均升高,差异均有统计学意义(P均<0.05)。与模型组及空载体组相比较,miR-30b-5p沉默组的TC、TG、ALT、AST表达水平均降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见表3。
表3 各组血脂及肝功能指标比较()
注:与对照组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与空载体组比较,cP<0.05
由图1可知,对照组肝小叶结构完整,肝索呈放射性分布,肝细胞内几乎无脂肪堆积;模型组和空载体组的肝细胞内有大量脂肪堆积,且门管区有炎性细胞,部分肝细胞坏死,多数已有纤维化病变;沉默组的肝细胞病变程度轻于模型组和空载体组,但仍可见肝小叶内部分汇管区有炎性反应,少数肝细胞坏死。
图1 各组肝脏组织的病理学变化 HE染色 ×400 A 对照组 B 模型组 C 空载体组 D 沉默组
各组肝脏组织miR-30b-5p、TLR4 mRNA水平比较,差异均有统计学意义(P均<0.05)。与对照组相比较,模型组、空载体组及沉默组肝脏组织的miR-30b-5p、TLR4 mRNA水平均升高,差异有统计学意义(P<0.05)。与模型组及空载体组相比较,沉默组肝脏组织的miR-30b-5p、TLR4 mRNA水平均降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见表4。
表4 各组肝脏组织miR-30b-5p、TLR4 mRNA的水平比较()
注:与对照组比较,aP<0.05;与模型组比较,bP<0.05;与空载体组比较,cP<0.05
对照组、模型组、空载体组及沉默组肝脏中TLR4蛋白水平分别为0.55±0.10、1.49±0.15、1.51±0.11和0.85±0.14,组间比较差异有统计学意义(P<0.05)。与对照组相比较,模型组、空载体组及沉默组的TLR4蛋白水平均升高,差异有统计学意义(P<0.05)。与模型组及空载体组相比较,沉默组的TLR4蛋白水平均降低,差异有统计学意义(P<0.05)。见图2。
图2各组肝脏TLR4蛋白水平比较A对照组B模型组C空载体组D沉默组
NAFLD的发病率逐年升高,不仅严重影响了人们的日常生活,也加大了社会负担。目前,关于NAFLD的发病机制尚未完全阐明,多认为其发病与遗传、氧化应激、胰岛素抵抗及肝脏脂代谢紊乱等有关[13]。本研究采用高脂饲料饲养SD大鼠,通过观察高脂饲料饲养的大鼠肝脏HE染色图像,发现肝细胞内大量脂肪堆积,且门管区有炎性细胞,部分肝细胞坏死,多数已有纤维化病变,表明NAFLD大鼠模型造模成功,可用于后续实验。目前NAFLD的治疗药物主要包括二甲双胍、阿托伐他汀及奥利司他等,但上述药物的疗效欠佳[14]。因此,亟待开发用于治疗NAFLD的新药物。随着基因工程技术的不断发展,针对疾病的靶向治疗药物的研究取得了突出成绩。本文探究了沉默miR-30b-5p对NAFLD大鼠的影响,以期阐明NAFLD的发病机制,为靶向药物的研制提供参考。
本研究通过尾静脉注射si-miR-30b-5p腺病毒载体抑制大鼠肝脏miR-30b-5p水平,发现沉默组大鼠肝脏miR-30b-5p水平低于模型组及空载体组,表明沉默miR-30b-5p成功,可用于本实验研究。通过比较发现,沉默组的肝脏湿重、肝脏指数、TC、TG、ALT及AST水平均低于模型组及空载体组,表明沉默miR-30b-5p可降低肝脏血脂水平,改善肝功能。有研究表明,TLR4/核因子κB(NF-κB)信号通路的活化可促进THP-1单核细胞分泌肿瘤坏死因子α及白细胞介素-1β,进而参与调节炎性反应[15]。目前有多项报道指出TLR4在NAFLD中高表达,抑制TLR4表达可改善NAFLD大鼠的肝脏脂质堆积、炎性反应及纤维化进展[5-6,16]。本研究结果显示,沉默组大鼠肝脏的TLR4 mRNA及TLR4蛋白水平均低于模型组及空载体组,提示沉默miR-30b-5p可抑制TLR4 mRNA及TLR4蛋白表达。
综上所述,沉默miR-30b-5p可抑制高脂饲料饲养所致的NAFLD损伤,从而保护肝脏,其机制可能与下调TLR4有关。本研究的结果为从基因水平上治疗NAFLD提供了参考。
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