（6,5）单壁碳纳米管对盐酸阿霉素的载药研究

仲文博，张 敏，章弘扬，王月荣，胡 坪

（华东理工大学1.药学院，上海市新药设计重点实验室；2.化学与分子工程学院，上海市功能性材料化学重点实验室，上海200237）

盐酸阿霉素（Doxorubicin Hydrochloride，Dox）是一种常见的蒽环类抗肿瘤药物，该药物可以嵌入DNA 中破坏拓扑异构酶II介导的DNA 修复，实现抗肿瘤作用[1]。Dox 具有广谱抗肿瘤的优点，对多种癌症有较好的治疗效果，但其毒副作用和肿瘤细胞对Dox 的耐药性[2]对它的临床应用造成一定程度的限制。为了解决上述问题，李颖[3]构建了阿霉素/二甲双胍共载脂质体，从而改变药物进入细胞的方式，降低了阿霉素的毒副作用。文献[4]制备了柠檬酸盐稳定的Fe3O4纳米颗粒装载阿霉素，使阿霉素在肿瘤的弱酸性环境中可以大量释放，增大药物浓度以提高药效。

碳纳米管是由单层或多层石墨六边形网格平面沿手性矢量卷绕而成的管状结构[5-6]，分别命名为单壁碳纳米管（Single-Walled Carbon Nanotubes，SWCNTs）和多壁碳纳米管。单层石墨片沿不同的卷曲方向可以获得手性结构不同的SWCNTs，不同手性的（n,m）SWCNT 具有不同的性质。当n−m=3q（q为正整数）时，被称为半金属型碳管；当n−m=0时，被称为金属型碳管，其导电率可高达铜的近千倍；当n−m=3q±1时，被称为半导体型管，具有优异的电子迁移率[7]。SWCNTs具有独特的结构，可以穿透细胞膜[8]，而且其比表面积较大，可以实现药物的有效负载[9]。SWCNTs经各种物质修饰改性可以制备纳米载药体系，从而实现对药物的运输以及可控释放[10-11]，减小肿瘤细胞对药物的耐药性[12]。当前方法制备得到的SWCNTs含有多种手性以及无定形碳等杂质，对其应用造成了一定的限制，因而需要对其分离以获得单一手性的SWCNT。

叶酸（Folic Acid，FA）受体在多种肿瘤细胞如乳腺癌、子宫内膜癌等中高表达[13]。将FA 作为寻靶分子修饰药物载体材料，通过FA 与FA 受体特异性结合，增强给药体系的肿瘤主动靶向性，降低其在正常组织中的分布，减少不良反应的发生，从而获得更好的治疗效果。人血清白蛋白（Human Serum Albumin，HSA）是人体血浆中含量最高的蛋白质，约占血浆总蛋白含量的50%，由肝脏合成。HSA 具有丰富的可修饰基团，可与药物以化学键共价结合，起到存储与运输药物的作用[14]。HSA 具有安全无毒、无免疫源性和生物相容性高等优点。

本文以分离后的SWCNT作为载药工具，制备了一种（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 四元靶向纳米载药系统。以HSA 作为桥梁，将FA 和Dox 以共价键连接，通过FA 提高给药的靶向性；HSA 增强了（6,5）SWCNT 在水中的分散性，其生物相容性也降低了（6,5）SWCNT对细胞的毒性作用；同时因单一手性（6,5）SWCNT的存在更进一步提高了复合物对癌细胞的抑制作用。

1 实验部分

1.1 原料和试剂

盐酸阿霉素（Dox）：纯度98%，上海阿拉丁生化科技股份有限公司；高碘酸钠（NaIO4）：分析纯，上海麦克林生化科技有限公司；人血清白蛋白（HSA）：纯度96%～99%（琼脂糖凝胶电泳），上海耐澄生物科技有限公司；氰基硼氢化钠（NaCNBH3）：纯度95%，上海麦克林生化科技有限公司；FA：纯度≥97%（液相色谱），上海阿拉丁生化科技股份有限公司；1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚胺盐酸盐（EDC·HCl）：纯度≥99%，上海笛柏生物科技有限公司；SWCNTs：管径范围0.7～0.9 nm，碳质量分数≥95%，SWCNTs质量分数≥93%，Sigma-Aldrich 有限公司；聚乙二醇（PEG）：Mw=6 000，Sigma-Aldrich 公司；葡聚糖（Dex）：Mw=70 000，京化成工业株式会社；十二烷基硫酸钠（SDS）：化学纯，永华化学科技（江苏）有限公司；脱氧胆酸钠（SDC）：纯度98%，Sigma-Aldrich 公司；二乙烯三胺五甲叉膦酸（DTPMP）：ω为50%的水溶液，阿达玛斯试剂有限公司；透析袋：截留分子量为12 000～14 000，美国Spectrumlabs公司；BCA 蛋白浓度测定试剂盒：P10012S，上海碧云天生物技术有限公司；实验用水均为超纯水。

1.2 仪器

SCQ-250F型功率可调细胞粉碎机（中国上海声彦超声波仪器有限公司）；GT 16-WS型高速离心机（中国赛默飞世尔科技公司）；UV-2600型紫外-可见-近红外（UV-Vis-Nir）吸收光谱仪（日本岛津公司）；ST-360型酶标仪（中国上海科华生物工程股份有限公司）；NICOLET 380型傅里叶转换红外光谱仪（FTIR，中国赛默飞世尔科技公司）。

1.3 实验步骤

1.3.1 Dox-HSA-FA 的制备及优化Dox-HSA-FA 的制备路线如图1所示，称取10.0 mg Dox，加入1.0 mL超纯水溶解，再加入稍过量的0.1 mol/L NaIO4溶液，室温下避光反应1 h。加入适量的1.0 mol/L 丙三醇溶液以中和过量的NaIO4，反应30 min。称取60.0 mg HSA，加入2.0 mL Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液（0.1 mol/L，pH=9.0）溶解，加入上述反应液中，反应1 h，然后加入适量NaCNBH3，在37℃下避光反应2 h[15-16]。反应液经离心，透析后冻干，得到Dox-HSA 的冻干产物。调整NaCNBH3的质量分别为10、20、30、40 mg，同时调整Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液的pH 值(9.0、9.5、10.0、11.0、12.0)，重复上述实验进行优化。

图1 Dox-HSA-FA 的制备路线Fig.1 Preparation routeof Dox-HSA-FA

称取5.0 mg FA，加入5.0 mL 二甲基亚砜溶解。再加入30.0 mg 的EDC·HCl，室温下避光反应1 h 以活化FA 上的羧基。称取30.0 mg Dox-HSA 的冻干产物，加入1.0 mL Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液（0.1 mol/L，pH=9.8）溶解，加入上述反应液中，反应2 h[17]，然后反应液离心，透析后冻干，得到Dox-HSA-FA 的冻干产物。

1.3.2 Dox-HSA 复合物中Dox 的质量浓度测定 配制1.0 mg/mL Dox 储备液，并逐级稀释至质量浓度（ρDox）分别为0.2、10.0、15.0、20.0、25.0、30.0、35.0μg/mL，分别测定其在495 nm 的吸光度（A495），绘制A495对于ρDox的一元回归曲线。测定Dox-HSA 溶液的A495，代入一元回归曲线方程，计算Dox-HSA 中Dox 的质量浓度。

1.3.3 复合物中HSA 的质量浓度测定 采用BCA

（二喹啉甲酸）法测定Dox-HSA、Dox-HSA-FA 中HSA的质量浓度。配制1.0 mg/mL HSA 标准母液，逐级稀释至质量浓度（ρHSA）分别为0.006、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mg/mL，每个质量浓度设置两个平行。将BCA 试剂A 和试剂B以体积比为50∶1混合，配成BCA 工作液。分别取20μL、不同质量浓度的HSA标准溶液以及复合物溶液，再加入200μL BCA 工作液混合，室温下静置2 h。分别测定样品在559 nm 的吸光度（A559），绘制A559对于ρHSA的一元回归曲线。将复合物样品的A559代入一元回归曲线方程，计算复合物中HSA的质量浓度。

1.3.4 Dox-HSA-FA 复合物中FA 的质量浓度测定称取1.0 mg FA 溶于1 mL Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液，配成1.0 mg/mL FA 标准母液，逐级稀释至质量浓度（ρFA）分 别 为0.5、10、20、30、40、50μg/mL 的FA 标准溶液，分别测定其在360 nm 的吸光度（A360），绘制A360对于ρFA的一元回归曲线。测定样品的A360，代入一元回归曲线方程，计算Dox-HSA-FA 中FA 的质量浓度。

1.3.5 （6,5）SWCNT的分离 称取1.0 mg （w=2%，1 mL）SWCNTs加入SDC溶液，在225 W 下超声1 h，同时冰水浴冷却，离心1 h，取上清液得到SWCNTs分散原液。移取PEG溶液（w=15%，250μL）和Dex 溶液（w=15%，250μL）混合离心得到上相富含PEG，下相富含Dex 的双水相系统。加入10μL SWCNTs分散原液后混合，离心。加入SDS溶液（w=10%，18μL）后混合，离心。加入适量DTPMP溶液混合离心，使上相呈现出灰绿色，下相呈现出紫色。弃去上相，然后加入250μL预先静置平衡的双水相系统的上相，混合离心，上相呈现紫色。加入适量SDC溶液，混合并离心，下相中最终得到淡紫色（6,5）SWCNT溶液，测定样品的UV-Vis-Nir 光谱。

1.3.6 （6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 的制备 将15.0 mg Dox-HSA-FA 加入900μL 超纯水和100μL Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液中溶解。加入上述方法制备所得的（6,5）SWCNT 液体经加热后析出的（6,5）SWCNT固体，在225 W 下超声1 h，同时冰水浴冷却，离心1 h，取上清液得到（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 溶液。

1.3.7 （6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 对Hep G2细胞抑制率的测定 将含有0.1 mg/mL Dox 的（6,5）SWCNTDox-HSA-FA 溶液用培养基逐级稀释，使ρDox依次分别为50.0、25.0、12.5、6.3、3.1 μg/mL。将含有0.1 mg/mL Dox 的Dox-HSA、Dox-HSA-FA 溶液以相同的方法进行稀释。取96孔板进行铺板，每孔约有6 000个Hep G2细胞，周边孔用磷酸盐缓冲液溶液填充，在培养箱中于37℃、体积分数为5%的CO2的条件下培养24 h。弃去旧培养基，加入上述含有不同质量浓度Dox 复合物的新培养基，每个复合物质量浓度设置5 个复孔，培养24 h。弃去旧培养基，加入新培养基，并加入MTT（噻唑蓝）溶液，培养4 h。弃去旧培养基，加入二甲基亚砜，振摇10 min 后，用酶标仪在492 nm 下测定其吸收值，考察Hep G2细胞的存活率。

2 结果与讨论

2.1 Dox-HSA-FA 的表征

测定Dox、HSA、FA、Dox-HSA-FA 的UV-Vis-Nir 吸收光谱，结果如图2(a)所示。Dox 在495、290 nm处的吸收峰为其特征吸收峰，HSA 在280 nm 处的吸收峰为其特征吸收峰，FA 在360、280 nm 处的吸收峰为其特征吸收峰。由于HSA 和FA 在495 nm 处无吸收，并且经过透析后Dox-HSA-FA 样品中已不含游离的Dox，故Dox-HSA-FA 在495 nm 处的特征吸收峰来源于已偶联的Dox。虽然Dox 在360 nm 处也有弱吸收，但其吸光度仅为495 nm 处吸光度的14.3%，并且Dox-HSA-FA 经过透析已经完全除去游离的FA，由此可以断定三元复合物在360 nm 处吸收峰来源于已偶联的FA。根据UV-Vis-Nir 吸收光谱能够初步证实Dox、HSA、FA 三者实现偶联。

测定Dox、HSA、FA、Dox-HSA-FA 的FT-IR 光谱，结果如图2(b)所示。在3 327、1 583、1 284、995 cm−1处的吸收峰为Dox 的特征吸收峰。在3 306、1 656、1 538 cm−1处的吸收峰为HSA 的特征吸收峰。在3 327、3 116、1 694、1 606、1 484 cm−1处的吸收峰为FA 的 特 征 吸 收 峰。Dox-HSA-FA 在3 292、1 655、1 536 cm−1处出现了强吸收峰。比较复合物与Dox、HSA、FA 的IR 光谱，可以得出上述强吸收峰主要来源于HSA。但是由于复合物中HSA 的含量远远高于Dox 和FA 的含量，Dox和FA 的特征吸收峰基本被覆盖。结合UV-Vis-Nir 吸收光谱图，可以证明Dox、HSA、FA 三者偶联成功。

图2 Dox、HSA、FA、Dox-HSA-FA 的（a）UV-Vis-Nir 光谱图和（b）FT-IR 光谱图Fig.2（a）UV-Vis-Nir spectra and （b）FT-IR spectra of Dox,HSA,FA and Dox-HSA-FA

2.2 Dox-HSA 中Dox 对HSA 偶联比

2.2.1 Dox-HSA 中Dox 和HSA 的质量浓度HSA 在495 nm 处无吸收，故在495 nm 下测定Dox-HSA 中Dox 的质量浓度。Dox 的A495对ρDox的一元线性回归曲线方程为：A495=23.1ρDox+0.015 1，R2=0.999 8。将Dox-HSA 溶液的A495代入上述回归曲线方程，得到Dox-HSA 溶液中ρDox=0.31 mg/mL。

HSA 与BCA 试剂形成紫色的复合物，该复合物的最大吸收波长在559 nm 处，故在559 nm 下测定Dox-HSA 中HSA 的质量浓度。A559对ρHSA的一元线性回归曲线方程为：A559=1.354 7ρHSA+0.012 7，R2=0.999 8。将Dox-HSA 样品溶液的A559代入上述回归曲线方程，得到Dox-HSA 溶液中ρHSA=12.09 mg/mL。

2.2.2 Dox-HSA 中Dox 对HSA 偶联比的确定 采用式（1）[17]计算Dox 对HSA 的偶联比：

其 中：MDox/MHSA为Dox 对HSA 的 偶 联 比；ρDox为Dox 的 质 量 浓 度（mg/mL）；Dox 的 相 对 分 子 量 为597.99；ρHSA为HSA 的质量浓度（mg/mL）；HSA 的相对分子量为66 000。

将ρDox=0.31mg/mL，ρHSA=12.09 mg/mL 代入式（1），得MDox/MHSA=2.8。文献[18-20]报道当Dox 对血清白蛋白的偶联比为2～5时，可以克服Dox 对肿瘤细胞的耐药性，而且偶联比越高，说明每单位质量HSA 负载的Dox 越多。

2.3 Dox-HSA 的制备方法优化

按照2.1节中所述方法测定不同条件下制备所得Dox-HSA 中Dox 对HSA 的偶联比，考察NaCNBH3的质量和Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液的pH 用来优化实验。当NaCNBH3的质量分别为10、20、30、40 mg时，偶联比分别为3.3、2.9、2.4、2.4，说明10 mg为NaCNBH3的合适用量，过量使用NaCNBH3反而使偶联比下降。当Na2CO3-NaHCO3缓冲溶液的pH分别为9.0、9.5、10.0、11.0、12.0时，偶联比分别为2.8、3.3、3.2、3.3、3.2，表明pH>9.5时，偶联比均位于3～5之间，具有较高的偶联比，可以克服Dox 对肿瘤细胞的耐药性[18-20]。

2.4 Dox-HSA-FA 中FA 对HSA 偶联比

2.4.1 Dox-HSA-FA 中FA 和HSA 的质量浓度 FA 的特征吸收峰位于360 nm 处，故360 nm 作为测定Dox-HSA-FA 中FA 质量浓度的特征吸收波长。FA 的A360对ρFA的一元线性回归曲线方程为：A360=16.2 ρFA+0.011 6，R2=0.999 8。将Dox-HSA-FA 的A360代入上述回归曲线方程，得到Dox-HSA-FA 溶液中ρFA=0.48 mg/mL。将Dox-HSA-FA 样品溶液的A559代入HSA 的一元线性回归曲线方程，得到Dox-HSAFA 样品溶液中ρHSA=20.91 mg/mL。

2.4.2 Dox-HSA-FA 中FA 对HSA 偶联比的确定采用式（2）[17]计算FA 对HSA 偶联比：

其中：MFA/MHSA为FA 对HSA 的偶联比；ρFA为FA的质量浓度（mg/mL）；FA 的相对分子量为441.40。

将ρFA=0.48 mg/mL，ρHSA=20.91mg/mL 代入式（2），得出MFA/MHSA=3.4。

2.5 （6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 的制备及表征

本文选用的SWCNTs中含有多种手性体，如（7,6）SWCNT、（7,5）SWCNT、（8,3）SWCNT、（6,5）SWCNT、（9,1）SWCNT、（7,3）SWCNT和（6,4）SWCNT。未分离的SWCNTs分散液中由于多种手性SWCNTs的存在而呈现出黑色，分离后的（6,5）SWCNT溶液呈现出紫色，如图3(a)所示。分离后的（6,5）SWCNT 溶液在571 nm 和985 nm 处出现了较强的吸收峰，且峰形尖锐。与未分离的SWCNTs溶液相比，（6,5）SWCNT在1 120、1 024、912、952、873 nm 处和505 nm处并未出现明显的吸收峰，而这些吸收峰分别为（7,6）SWCNT、（7,5）SWCNT、（9,1）SWCNT、（8,3）SWCNT、（6,4）SWCNT、（7,3）SWCNT 的特征吸收峰。因此，可以确定分离所得为单一手性的（6,5）SWCNT。

由图3(b)可知，四元复合物（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 在360 nm 处的吸收峰为FA 和（6,5）SWCNT共同叠加得到的吸收峰。四元复合物（6,5）SWCNTDox-HSA-FA 在495 nm 处 的 吸 收 峰 为Dox 和（6,5）SWCNT共同叠加得到的吸收峰。571 nm 和985 nm 处的吸收峰为（6,5）SWCNT 的特征吸收峰，可以证明复合物中（6,5）SWCNT的存在，进一步证明成功制备得到（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA。

2.6 （6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 中（6,5）SWCNT的质量浓度

由于985 nm 处的吸收峰为（6,5）SWCNT的特征吸收峰，而且Dox、FA、HSA 均在此波长处无吸收峰，故位于985 nm 处的吸光度（A985）可以作为测定（6,5）SWCNT质量浓度的依据。配制SWCNTs的质量浓度（ρSWCNTs）分别为0.1、1、2、4、8、10μg/mL的SWCNTs分散液。由于SWCNTs中（6,5）SWCNT的初始质量分数为41%，故（6,5）SWCNT的质量浓度（ρ(6,5)SWCNT）分 别 为0.041、0.41、0.82、1.64、3.28、4.1μg/mL。测定其A985并绘制A985对ρ(6,5)SWCNT的一元线性回归曲线方程：A985=0.224 4ρ(6,5)SWCNT+0.023 6，R2=0.999 1。测定（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 的A985，代入上述回归曲线方程，得到ρ(6,5)SWCNT=48.4μg/mL。

图3 (a)SWCNTs 分散液、（6,5）SWCNT 的实物图和UV-Vis-Nir 光谱图；(b)Dox-HSA-FA、（6,5）SWCNT、（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 的UV-Vis-Nir 光谱图Fig.3(a)Photo of SWCNTs dispersion and(6,5)SWCNT,and UV-Vis-Nir spectra of SWCNTs dispersion and（6,5）SWCNT;(b) UV-Vis-Nir spectra of Dox-HSA-FA,（6,5）SWCNT,and （6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA

2.7 （6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 对Hep G2细胞的毒性作用

（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 对Hep G2细胞的抑制作用的结果如图4所示。经3种复合物作用后，随着Dox 质量浓度的增加，Hep G2细胞整体的存活率逐渐减小。但各复合物的作用效果之间存在一定的差异，当ρDox由3.1μg/mL 增加至50.0 μg/mL，经Dox-HSA作用后的细胞存活率由95.7%减少至70.1%，仅减少了25.6%；而经Dox-HSA-FA 作用后的细胞存活率由87.3%减少至13.7%，减少了73.6%；经（6,5）SWCNTDox-HSA-FA 作用后的细胞存活率由84.9%减少至11.1%，减少了73.8%。由此得出，随复合物质量浓度的增加，细胞存活率的下降幅度为：（6,5）SWCNTDox-HSA-FA>Dox-HSA-FA>Dox-HSA。由GraphPad Prism 软件计算Dox-HSA-FA 和（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 的IC50（半数抑制浓度）分别为27.3μg/mL和25.7 μg/mL。Dox-HSA-FA、（6,5）SWCNT-Dox-HSAFA 的IC50与Dox-HSA 相比，差异均为极显著性。

图4 经Dox-HSA、Dox-HSA-FA、（6,5）SWCNT-Dox-HSAFA 作用24 h 后Hep G2细胞的存活率Fig.4 Cell viability of Hep G2 cells treated with Dox-HSA, Dox-HSA-FA,（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA for 24 h

在ρDox相同的条件下，经Dox-HSA-FA 作用后的细胞存活率均小于经Dox-HSA 作用后的细胞存活率，经（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 作用后的细胞存活率又略微小于Dox-HSA-FA 作用后的细胞存活率。综合比较得出，Dox-HSA 对细胞的毒性作用一般，而Dox-HSA-FA 和（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 对 细 胞的毒性作用明显，并且后者的毒性作用更强。由此可见复合物中FA 起到了很好的靶向作用，增强了复合物对细胞的毒性作用，并且分离后的（6,5）SWCNT在一定程度上可以协助Dox 在Hep G2细胞内的输送，又在一定程度上增强了复合物对细胞的毒性作用。

选取ρDox分别为6.3、12.5μg/mL 的SWCNTs-Dox-HSA-FA 和（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 4个复合物，分别将其与Hep G2细胞共培养24、48、72 h，测定Hep G2细胞的存活率，结果如图5所示。在ρDox为6.3、12.5μg/mL 质量浓度下，经（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 作用后的细胞存活率均低于经SWCNTs-Dox-HSA-FA 作用后的细胞存活率。原因可能为经分离后所得的（6,5）SWCNT去除了SWCNTs样品中的无定形碳等杂质，更有利于Hep G2细胞对药物的内吞与扩散。因此，分离纯化后的（6,5）SWCNT比未分离的SWCNTs有更好的药物运输作用。

图5 经SWCNTs-Dox-HSA-FA、（6,5）SWCNT-Dox-HSAFA 作用24、48、72 h 后Hep G2细胞的存活率Fig.5 Cell viability of Hep G2 cells treated with SWCNTs-Dox-HSA-FA and（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA for 24,48,72 h

与此同时，随着复合物与Hep G2细胞共培养时间逐渐增加，Hep G2细胞的存活率逐渐降低。当ρDox=6.3 μg/mL 时，Hep G2细胞经SWCNTs-Dox-HSAFA 作用后，细胞存活率由24 h 时的75.0%分别下降到52.6%（48 h）和40.4%（72 h），分别下降了22.4%、34.6%；经（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 作用后，细胞存活率由24 h 时的70.8%分别下降到43.2%（48 h）、31.3%（72 h），分别下降了27.6%、39.5%。当 ρDox=12.5μg/mL 时，Hep G2细胞经SWCNTs-Dox-HSAFA 作用后的细胞存活率由51.7%下降到47.5%再到32.1%；经（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 作用后，细胞存活率由44.0%下降到32.7%再到23.7%，可以证明，此两种复合物对Hep G2细胞的抑制作用均随着时间的增加而相应增强。培养48、72 h 以后，（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 作用下的细胞存活率与SWCNTs-Dox-HSA-FA 相比，差异均为极显著性。经分析发现，4种条件下细胞的存活率随时间增加而造成的下降趋势存在细微差异。当 ρDox=6.3μg/mL时，两种复合物在培养时间由24 h 增加到48 h时细胞的存活率下降幅度非常明显，在48 h增加到72 h后呈现平缓下降趋势。分析原因可能是由于当 ρDox=6.3μg/mL 时，此质量浓度相对较低，培养24 h后无法对Hep G2细胞起到明显的抑制作用，适当延长培养时间到48 h，可以增强抑制作用。值得注意的是，给药48～72 h 后，低质量浓度（6,5）SWCNT复合物的抑制作用与高质量浓度未分离SWCNTs复合物的抑制作用接近。

3 结 论

本文建立了一种（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA 复合物的制备方法。首先，以HSA 为桥梁，通过反应将Dox 和FA 共价偶联，制备了Dox-HSA-FA。其次，用双水相萃取法分离得到单一手性且纯度较高的（6,5）SWCNT。最后，利用Dox-HSA-FA 对（6,5）SWCNT进行分散，制备了（6,5）SWCNT-Dox-HSA-FA。本方法有效地将Dox、HSA、FA、（6,5）SWCNT 四者复合。利用复合物中FA 的靶向性，以（6,5）SWCNT作为药物载体，实现Dox 靶向运送到Hep G2细胞，不仅提高肿瘤细胞对Dox 的摄取，使其抗肿瘤活性得到增强。相较于未经分离的包含多种手性体的SWCNTs混合物，（6,5）SWCNT去除了SWCNTs样品中其他手性体及无定形碳等杂质，更有利于Hep G2细胞对药物的内吞及在胞内扩散。