时间:2024-08-31
沈思乔 肖晓玲 朱晓菲 冯振博
乳腺癌是女性最常见的恶性肿瘤,也是女性癌症死亡的主要疾病之一[1]。尽管近年来诊断技术不断发展,但乳腺癌的发病率与死亡率依然较高[2],且有年轻化趋势[3]。由于遗传和环境因素的影响,乳腺癌的发病机制较复杂。miRNAs是一类由18~24nt组成的短链非编码RNA,转录后可对下游靶基因进行调控[4,5]。研究表明miRNAs在抑制乳腺癌细胞凋亡和促进细胞分裂方面发挥重要作用[6]。例如,miR-155、miR-221/miR-222、miR-373和miR-520c在乳腺癌中呈高表达,被认为是促癌基因[7~9];miR-34、miR-200c和miR-205在乳腺癌中呈低表达,被认为是抑癌基因[10~13]。miR-204 作为 miRNAs中的一员,在乳腺癌组织中呈低表达[14],但有关其生物学功能的报道仍较少。本研究对癌症和肿瘤基因组图谱(the cancer genome atlas,TCGA)数据库中浸润性乳腺癌的miR-204相关数据进行汇总分析,并采用慢病毒技术转染人乳腺癌MCF-7细胞株,通过MTT法及流式细胞仪检测miR-204的增殖和凋亡能力,为进一步研究miR-204在乳腺癌中的作用奠定基础。
使用TCGA数据库(http://cancergenome.nih.gov/)获取浸润性乳腺癌的相关实验及临床数据。人乳腺癌MCF-7细胞株购自中国科学院上海细胞库;DMEM(高糖)培养液、胰蛋白酶及胎牛血清均购自南京Wisent公司;青链霉素购自北京索莱宝公司;RNA提取试剂盒购自美国Axgyen公司;cDNA逆转录试剂盒、miRNA检测试剂盒(SYBR Green)、荧光定量PCR引物均购自北京天根生化科技有限公司;RNase-Free Water购自上海碧云天公司;四甲基偶氮唑蓝(MTT)、二甲基亚砜(DMSO)、嘌呤霉素均购自美国Sigma公司;PE An-nexin V/7AAD凋亡试剂盒、流式细胞仪均购自美国BD公司。
1.2.1 TCGA数据提取及分析 在TCGA旗下的子数据库 cBioPortal(http://www.cbioportal.org/)中选取浸润性乳腺癌1105例标本进行整理汇总,并分析其相关临床参数。
1.2.2 细胞培养 人乳腺癌MCF-7细胞株培养于10%胎牛血清的DMEM培养基中,内含1%青链霉素,置于含5%CO2、37℃恒温孵育箱中培养,每天予换液处理。
1.2.3 细胞转染 转染所用的病毒购自上海吉凯公司,取对数生长期的乳腺癌MCF-7细胞接种于6孔板中,浓度为1×105个/孔,次日融合度达30%~40%时开始转染,按照吉凯基因病毒转染操作说明书将miR-204过表达病毒及阴性对照病毒转染至乳腺癌MCF-7细胞。按照转染病毒的不同,将实验分为3组:转染miR-204过表达病毒的实验组(LV-hsa-miR-204组)、转染阴性病毒的阴性对照组(NC组)以及空白对照组(control组),转染后用含 1 μg/mL浓度嘌呤霉素的培养液进行稳定转染细胞株的筛选,并进行后续实验。
1.2.4 RNA提取及实时荧光定量PCR(RT-qPCR)按照RNA提取试剂盒的操作手册对各组细胞进行总RNA 提取,用核酸检测仪 NanoDrop 2000(Thermo,美国)对总RNA 浓度进行质控,使 1.8<OD260/280<2.0。将RNA逆转录成cDNA后,按照miRNA检测试剂盒(SYBR Green)说明手册配制反应体系,并上机进行检测分析。内参U6及miR-204的引物均购自北京天根生化科技有公司,序列未知。目的基因的相对表达量用 2-△△Ct方法计算。
1.2.5 MTT法检测细胞增殖活性 将筛选出的稳定转染的3组细胞(LV-hsa-miR-204组、NC组、control组)于对数生长期时接种于96孔板中,密度为3000个/孔,每组设置5个复孔,四周的空孔用PBS填充,每隔24 h检测1次,连续检测至96 h。每次每孔加入20 μL MTT溶液,放入孵育箱中培养4 h后,弃掉培养液,每孔加入150 μL DMSO,震荡10 min充分反应后,酶标仪检测570 nm处吸光度值,并绘制细胞生长曲线。实验重复3次。
1.2.6 PE Annexin V/7AAD法(流式细胞仪法)检测细胞凋亡 将3组细胞培养72 h后,用不含EDTA的胰蛋白酶分别消化细胞,并用冷PBS液洗涤2次后收集细胞,用 100 μL 1×Binding Buffer重悬细胞并转移至流式检测管内,每管分别加入5 μL PE Annexin V和5 μL 7AAD,室温避光反应15 min后,再加入400 μL 1×Binding Buffer,于1 h内上机进行检测。UR为早期凋亡,LR为晚期凋亡,凋亡率=早期凋亡+晚期凋亡。每组设置3复孔,实验重复3次。
用SPSS 19.0软件对数据进行统计分析。计量资料用均数±标准差(±s)表示。两组间比较用独立样本t检验,多组间比较用单因素方差分析,临床病理特征与miR-204表达的关系用χ2检验。以P<0.05为差异具有统计学意义。
TCGA数据库中筛选具有完整临床资料的配对病例共808例,根据数据库中检测结果汇总后发现,miR-204在浸润性乳腺癌组织中的表达明显低于相应癌旁组织,差异具有统计学意义(P<0.001)。见图1。
图1 miR-204 mRNA在浸润性乳腺癌组织和癌旁组织中的表达
将808例浸润性乳腺癌患者按照年龄、性别、组织学分级、肿瘤浸润深度、是否淋巴结转移、是否远处转移进行分组。结果显示,miR-204低表达与淋巴结转移(P=0.026)和远处转移(P<0.001)相关,与患者年龄、性别等无关(P>0.05)。见表 1。
表1 浸润性乳腺癌组织中miR-204表达与临床病理特征的关系(n)
(续表)
miR-204过表达病毒转染乳腺癌MCF-7细胞后,筛选稳定转染细胞株,并用RT-qPCR对3组细胞的mRNA表达情况进行检测。结果显示,转染miR-204过表达病毒的LV-hsa-miR-204组miR-204的表达量明显高于NC组及control组,差异有统计学意义(P<0.001),提示成功构建过表达miR-204的乳腺癌MCF-7细胞株。见图2。
图2 miR-204 mRNA的相对表达量
3组细胞生长至 48 h时无明显差异(P>0.05),72 h开始 LV-hsa-miR-204组细胞增殖受到抑制,96 h细胞达到最大抑制,呈时间依赖性,与NC组和control组比较,差异均有统计学意义(P<0.05)。见图3。
图3 miR-204对乳腺癌MCF-7细胞增殖的影响
流式细胞仪检测结果显示,至72 h时,LV-hsamiR-204组细胞凋亡率达(34.7±1.9)%,较NC组的(6±0.7)%和 control组的(4.3±1.3)%明显增加,差异有统计学意义(P<0.001),说明过表达miR-204可增强细胞凋亡能力。见图4。
图4 miR-204对乳腺癌MCF-7细胞凋亡的影响
大量研究表明miRNAs在增殖、凋亡、侵袭及转移等生物过程中呈现失调状态,可影响肿瘤的发生、发展。Iorio等[6]通过整合分析其结构特点及功能研究发现,miRNAs在乳腺癌中发挥重要作用。miR-204已先后在不同肿瘤组织中发现表达低于正常组织,如非小细胞肺癌[15]、胃癌[16]、甲状腺癌[17]等。Li等[14]在39例乳腺癌组织标本中发现miR-204的表达量较癌旁组织低,并且低表达的miR-204与Ⅲ~Ⅳ期、远处转移及不良预后相关。鉴于Li等[14]样本量较少且来源地区较为局限,以及miR-204发生发展的潜在分子机制尚不清楚,因此本研究首先通过TCGA数据库收集大样本病例对其进行分析,并且采用细胞转染技术对乳腺癌细胞株的生物学功能进行检测。
TCGA数据库分析结果显示miR-204在浸润性乳腺癌组织中呈现低表达状态,临床参数分析结果显示,miR-204低表达主要与淋巴结转移及远处转移相关。由此可知,miR-204与乳腺癌的发生、发展有密切联系。为了进一步证实这种联系,本研究通过对乳腺癌MCF-7细胞转染miR-204过表达病毒,行MTT法验证,结果提示过表达miR-204能够抑制乳腺癌MCF-7细胞的增殖。
在肿瘤形成过程中,凋亡信号通路上的蛋白常表达异常,进而使肿瘤细胞的生长得不到控制。而miR-204对于细胞凋亡的影响却不明确,为此本研究分析了miR-204与细胞凋亡的关系,结果显示过表达miR-204后,细胞凋亡能力明显增强,尤其是介导了早期凋亡,说明其有效启动了凋亡程序。Wang等[18]发现miR-204通过靶向JAK2促进STAT3/bcl-2/survivin通路对肿瘤细胞进行调节,这与本研究的结论相呼应。
化疗作为乳腺癌术后综合性治疗手段之一,在乳腺癌治疗中占据重要地位,由于乳腺癌的特殊性,其化疗药物的使用很大程度上依赖于不同激素水平的改变,例如雌激素受体(ER)的表达[19]。有趣的是,ER正是miR-204的靶蛋白。Liu等[20]通过一系列实验发现,miR-204通过结合作用于ERα对AKT/mTOR通路进行调控,miR-204低表达时ERα呈高表达状态。他莫昔芬(Tamoxifen,TAM)作为ERα特效药,对ER阳性患者具有良好作用,ERα高表达时可以通过TAM抑制雌激素刺激,同样高表达的miR-204可以降低TAM的刺激。因此,miR-204不仅与乳腺癌的发生发展有着密切联系,对于乳腺癌的治疗也发挥重要作用。
由于miRNAs需通过靶向结合互补蛋白后,才能对下游功能进行调控,上述的bcl-2及ER不是其唯一的靶蛋白,通过不同数据库检索可知,一个miRNA可以靶向成百上千个蛋白,一个蛋白也往往结合数个miRNAs,而功能相近的miRNAs和蛋白形成了巨大的相互作用网,影响不同的信号通路,而不同的通路之间又可以相互影响,进而调控肿瘤的发生发展,因此miR-204对乳腺癌发生、发展的作用机制有待更进一步深入研究。
综上所述,本研究发现miR-204在乳腺癌中低表达,并且可能参与了乳腺癌的发生、发展。过表达miR-204可抑制乳腺癌细胞增殖,促进细胞凋亡,可作为抑癌基因发挥作用。这一结果为乳腺癌的治疗提供了新的靶点及思路,并为进一步研究其分子机制提供了一定参考。
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