时间:2024-08-31
李 涛,范 波,杨晋生,古选民
自体颅骨片是颅骨缺损修补术最为理想的修补材料,术前材料的消毒及保存方法有高压灭菌法、辐照法、深低温(-80℃)法及环氧乙烷(ethylene oxide,EO)法。高压灭菌方法对骨组织的强度影响较大,无法满足移植后强度的要求;辐照法和深低温(-80℃)法设备要求复杂,难以在普通医院推广;EO灭菌法所需设备简单,目前多数医院配备有此类设备,并广泛应用于医疗材料和器械的消毒,但该消毒方法是否可以应用于颅骨灭菌尚存在争论。本文初步观察了游离颅骨组织用EO灭菌的效果,现报道如下。
1.1材料采用神经外科去骨瓣减压术中切除的成人颅骨片32例,其中男23例,女9例,年龄22~57岁,脑外伤27例,脑出血6例,所有骨材料均经家属同意并经我院伦理委员会批准,取顶结节处切割成1 cm×1 cm大小,内、外板及板障结构完整,全层厚约1 cm的骨粒共104粒。
1.2方法
1.2.1 消毒前预处理 3%医用双氧水常温下浸泡骨粒24 h,再次更换双氧水后浸泡24 h,去除颅骨内的残留蛋白。置于50℃烘箱内4 h,1∶1氯仿甲醇室温下脱脂4 h,更换脱脂剂后重复1次,蒸馏水反复漂洗后,在自然条件下晾干,存放于通风环境中1个月。消毒前于40℃,相对湿度40%的温箱内存放4 h预湿,用双层环氧乙烷专用剥离式包装袋包装,每袋1粒,环氧乙烷指示胶带(3M公司生产)置于内层,严格检查包装袋有无漏气及破损。
1.2.2 消毒方法 所用EO灭菌器为3M公司生产的8XL型,环氧乙烷指示胶带为3M公司提供;骨材料按一定间距装入灭菌器,灭菌方法:热循环60℃,冷循环37℃;相对湿度50%;EO浓度600 mg/L,灭菌时间5 h,且指示胶带由黄绿色变为橘红色。
1.2.3 培养方法 将上述灭菌后的骨粒分为两组,每组均为52粒,A组骨粒置于自然通风环境下10 d,B组骨粒置于自然通风环境下3个月,严格在无菌条件下粉碎成颗粒状后加入5 mL无菌生理盐水,密闭后充分震荡3 min,离心后取上清液1 mL,每组标本等分后,行需氧及厌氧细菌培养。需氧培养基为10 g/L 葡萄糖肉汤培养基,37℃恒温培养3~9 d,如有混浊,接种于羊血培养基中37℃恒温培养72 h。厌氧培养为石蕊-牛乳培养基,于35℃培养8~24 h。菌种按全国临床检验操作规程(第2版)进行鉴定,如有酵母样菌落生长,转种至沙保罗氏培养基中培养。
1.2.4 评估标准 灭菌后标本行细菌培养,以培养无细菌生长作为骨材料无菌指标,并进行阳性样本细菌的鉴定。
1.2.5 统计方法 SPSS 19.0 统计软件进行统计分析,细菌阳性率的比较采用χ2检验,α=0.05。
A组标本培养结果:金葡菌4例,表葡菌2例,枯草芽孢菌6例,标本的阳性率为33.33%。B组标本培养结果:金葡菌5例,表葡菌2例,枯草芽孢菌8例,标本的阳性率为41.57%。两组标本均未培养出厌氧菌。两组标本阳性率相比χ2值分别为:金葡菌0.1073,表葡菌0.1324,枯草芽孢菌0.3547,总阳性率0.5333。经χ2检验均无统计学差异(P>0.05)。
EO是一种低分子量的环氧化合物,其分子式为C2H4O,呈无色透明状,有芳香气味。EO穿透性较强,在适当条件下,可以杀灭各类微生物,包括细菌的繁殖体、芽孢、病毒和真菌孢子。其灭菌的原理是EO与微生物的蛋白质,DNA和RNA发生不可逆的烷化作用,从而导致微生物的死亡,在目前的各种化学消毒剂或灭菌剂中效果最好。
EO的灭菌效果受以下4种因素影响:灭菌温度、相对湿度、EO浓度和灭菌时间,上述各值除EO浓度外,其余各值越大,灭菌效果越好,EO的最佳浓度取决于其他参数值。一般用于同种异体骨灭菌的参数为:温度20~60℃;有效湿度30%~60%;EO浓度450~1 500 mg/L,灭菌时间2~5 h[1]。本实验采用的参数接近于灭菌最有效值。
EO易于穿透剥离式包装袋,残留量较少,有人建议灭菌后的保存有效期为10个月[2]。颅骨的板障部分处于两层致密的骨皮质之间,其内为蜂房状结构,阻碍了EO的进一步挥发和穿透。在类似实验中皮质骨的标本阳性率较低[2],本实验阳性率与之相比有所增加并随着保存时间的延长阳性率增高,可能与松质骨的结构对EO的穿透性阻碍有关。这也导致松质骨的保存时间可能更短。
制备符合修补的自体颅骨片有两个关键因素:颅骨片的强度和颅骨灭菌的彻底性,有报道认为,EO仅能穿透致密的皮质骨约6 mm,建议仅用于颗粒骨的灭菌[2]。颅骨修补所用的材料可以在颅骨上打孔以增加颅骨内、外侧组织的爬行,加速移植的骨支架与组织的融合,同时也增加了灭菌的有效性,这是本文对这种灭菌方法应用探讨的基础。就目前现有的技术条件,很难做到使骨孔间的骨体积均小于6 mm×6 mm,EO对整块游离颅骨片的灭菌效果必定更不理想,这与Jho等采用此方法临床实践结论不一致[3-4]。
本实验的培养结果也证实了不同的微生物对EO的耐受性不相同:杆菌对EO灭菌敏感,而球菌则相对较差,芽孢对EO的抵抗最强;厌氧菌及真菌对EO的耐受性也较差。
用于回植的离体骨灭菌方法有多种,其中除EO法外,较为可行的有γ射线辐照、深低温保存(-80℃)、巴氏灭菌法及高压蒸汽灭菌等方法,其中以高压蒸汽灭菌法对骨强度的破坏最明显,其次为γ射线辐照,EO灭菌法对骨强度的破坏最小[5],标准25 kGy的剂量辐照后,骨的抗压缩性能降低25%,而且回植后移植骨的吸收也显著增加[6-7],由于辐照设备的复杂性,不适合医院使用。本实验结果表明,单纯EO灭菌法不适合游离颅骨片自体移植使用,能否找到一种既达到理想的灭菌效果,又保持颅骨片的强度的方法需要进一步探索,将上述灭菌方法结合起来使用可能是可行的方法。
参考文献:
[1] 黄靖雄.环氧乙烷灭菌[J].中华医院感染学杂志,2004,14(12):1435-1439.
[2] Wingenfeld C,Egli RJ,Hempfing A,et al.Cryopreservation of osteochondral allografts:dimethyl sulfoxide promotes angiogenesis and immune tolerance in mice[J].J Bone Joint Surg Am,2002,84(8):1420-1429.
[3] Jho DH,Neckrysh S,Hardman J,et al.Ethylene oxide gas sterilization:a simple technique for storing explanted skull bone[J].J Neurosurg,2007,107(2):440-445.
[4] Misssori P,Polli FM,Rastelli E,et al. Ethylene oxide sterilization of autologous bone flaps following decompressive craniectomy[J].Acta Neurochi,2003,145(10):899-903.
[5] Zhou Z,Qin T,Yang J,et al.Mechanical strength of cortical allografts with gamma radiation versus ethylene oxide sterilization[J].Acta Orthop Belg,2011,77(5):670-675.
[6] Nguyen H,Morgan DA,Forwood MR.Sterilization of allograft bone: effects of gamma irradiation on allograft biology and biomechanics [J].Cell Tissue Bank,2007,8(2):93-105.
[7] Biau DJ,Larousserie F,Thévenin F,et al.Results of 32 allograft-prosthesis composite reconstructions of the proximal femur[J].Clin Orthop Relat Res,2010,468(3):834-845.
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